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目錄:北京索萊寶科技有限公司>>生化檢測試劑盒-微量法>>微量法生化試劑盒>> BC5865-100T/48S甲基檸檬酸合酶活性檢測試劑盒 微量法

甲基檸檬酸合酶活性檢測試劑盒 微量法
  • 甲基檸檬酸合酶活性檢測試劑盒 微量法
參考價 面議
具體成交價以合同協議為準
參考價 面議
具體成交價以合同協議為準
  • 品牌 SOLARBIO/索萊寶
  • 型號 BC5865-100T/48S
  • 廠商性質 生產商
  • 產品資料 查看pdf文檔
  • 所在地 北京市
屬性

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更新時間:2024-04-23 16:15:19瀏覽次數:572評價

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CAS 詳詢 純度 詳詢
分子量 詳詢 分子式 詳詢
供貨周期 現貨 規格 100T/48S
貨號 BC5865 應用領域 環保,化工,生物產業,農業,綜合
主要用途 甲基檸檬酸合酶活性檢測
有效期
6個月
儲存條件
-20℃
中文名稱
甲基檸檬酸合酶活性檢測試劑盒 微量法
單位

英文名稱
Methylcitrate Synthase(MCS)Activity Assay Kit
檢測方法
微量法
規格
100T/48S

甲基檸檬酸合酶(MCS)活性檢測試劑盒說明書

微量法

貨號:BC5865

規格:100T/48S

產品組成:使用前請認真核對試劑體積與瓶內體積是否一致,有疑問請及時聯系索萊寶工作人員。

試劑名稱

規格

保存條件

提取液

液體60mL×1

-20℃保存

試劑一

液體0.6mL×1

-20℃保存

試劑二

液體20mL×1

2-8℃保存

試劑三

液體1mL×1

2-8℃保存

試劑四

粉劑×1

-20℃保存

試劑五

粉劑×1

-20℃保存

溶液的配制:

1、 試劑四:臨用前加入0.5mL蒸餾水充分溶解,未用完的試劑-20℃分裝保存4周,避免反復凍融。

2、 試劑五:臨用前加入1.5mL蒸餾水充分溶解,未用完的試劑-20℃分裝保存4周,避免反復凍融。

產品說明:

甲基檸檬酸合酶(metheyl-citrate synthaseMCS)廣泛存在于動物、植物、微生物和培養細胞的線粒體基質中,與檸檬酸合酶(CS)共同參與三羧酸循環的調節。

MCS催化丙酰CoA和草酰乙酸產生甲基檸檬酰*A,進一步水解產生甲基檸檬酸;該反應促使DTNB轉變成黃色的TNB412nm處有特征吸收峰,據此可以計算MCS活性


注意:實驗之前建議選擇2-3個預期差異大的樣本做預實驗。如果樣本吸光值不在測量范圍內建議稀釋或者增加樣本量進行檢測。

需自備的儀器和用品

可見分光光度計/酶標儀、微量玻璃比色皿/96孔板、天平、低溫離心機、水浴鍋、研缽/勻漿器/細胞超聲破碎儀、冰和蒸餾水。

操作步驟:

一、樣本處理(可適當調整待測樣本量,具體比例可以參考文獻

1. 組織:按照組織質量(g):提取液體積(mL)為15~10的比例(建議稱取約0.1g組織,加入1mL提取液)和10μL試劑一,進行冰浴勻漿。12000g4℃離心 10min,取上清置于冰上待測。

2. 細菌/細胞:按照細菌/細胞數量(106個):提取液體積(mL)為5~101的比例(建議5百萬細菌/細胞加入1mL提取液和10μL試劑一),冰浴超聲波破碎(功率200W,超聲3秒,間隔7秒,總時間5min);然后12000 g4℃離心10min,取上清置于冰上待測。

 

二、測定步驟

1、 可見分光光度計/酶標儀預熱30min以上,調節波長至412nm,分光光度計用蒸餾水調零。

2、 試劑二置于37℃水浴中預熱15min

3、 操作表:在微量比色皿/96孔板中依次加入(適用于測定動物組織樣本

試劑名稱(μL

對照管

測定管

試劑二

186

160

試劑三

7

7

試劑四

-

8

樣本

7

7

試劑五

-

18

在微量比色皿/96孔板中分別加入上述試劑,充分混勻后記錄412nm10s時的初始吸光度A1對照、A1測定,之后迅速將比色皿連同反應液一起置于37℃水浴中準確反應5min,迅速取出比色皿并擦干,412nm下記錄5min10s時的吸光度A2對照、A2測定,計算ΔA=A2測定-A1測定)-A2對照-A1對照)。

4、 操作表:在微量比色皿/96孔板中分別加入(適用于測定微生物及植物組織樣本

試劑名稱(μL

對照管

測定管

試劑二

153

127

試劑三

7

7

試劑四

-

8

樣本

40

40

試劑五

-

18

在微量比色皿/96孔板中分別加入上述試劑,充分混勻后記錄412nm10s時的初始吸光度A1對照、A1測定,之后迅速將比色皿連同反應液一起置于37℃水浴中準確反應30min,迅速取出比色皿并擦干,412nm下記錄30min10s時的吸光度A2對照、A2測定,計算ΔA=A2測定-A1測定)-A2對照-A1對照)。

三、甲基檸檬酸合酶(MCS)計算公式

1. 使用96孔板測定(動物組織樣本):

1)按樣本蛋白濃度計算:

酶活定義:每mg組織蛋白在反應體系中每分鐘催化產生1nmol TNB定義為一個酶活力單位。

MCS活性(U/mg prot=ΔA÷ε×d×V÷Cpr×V樣)÷T=700.28×ΔA÷Cpr

2)按樣本質量計算:

酶活定義:每g組織在反應體系中每分鐘產生1nmol TNB定義為一個酶活力單位。

MCS活性(U/g 質量)=ΔA÷ε×d×V÷W÷V提取×V樣)÷T=707.28×ΔA÷W

εTNB摩爾消光系數,13.6×10-3mL/(nmol·cm)d:比色皿光徑,0.6cmV反:反應體系體積,0.2mLV樣:反應體系中加入的樣本體積,0.007mLV提取:加入提取液及試劑一的體積,1.01mLT:反應時間,5minCpr:樣本蛋白濃度,mg/mLW:樣本質量,g

2. 使用96孔板測定(微生物及植物組織樣本):

1)按樣本蛋白濃度計算:

酶活定義:每mg組織蛋白在反應體系中每分鐘催化產生1nmol TNB定義為一個酶活力單位。

 

 

 

MCS活性(U/mg prot=ΔA÷ε×d×V÷Cpr×V樣)÷T=20.42×ΔA÷Cpr

2)按樣本質量計算:

酶活定義:每g組織在反應體系中每分鐘產生1nmol TNB定義為一個酶活力單位。

MCS活性(U/g 質量)=ΔA÷ε×d×V÷W÷V提取×V樣)÷T=20.63×ΔA÷W

3)按細菌/細胞計算:

酶活定義:每106個細菌/細胞在反應體系中每分鐘催化產生1nmol TNB定義為一個酶活力單位。

MCS活性(U/106 cell=ΔA÷ε×d×V÷N÷V提取×V樣)÷T = 20.63×ΔA÷N

εTNB摩爾消光系數,13.6×10-3mL/(nmol·cm)d:比色皿光徑,0.6cmV反:反應體系體積,0.2mLV樣:反應體系中加入的樣本體積,0.040mLV提取:加入提取液及試劑一的體積,1.01mLT:反應時間,30minCpr:樣本蛋白濃度,mg/mLW:樣本質量,gN:細菌或細胞總數,以106計。

3. 使用微量比色皿測定:

將上述公式中的d=0.6cm改為d=1cm(微量比色皿光徑)進行計算即可。

注意事項:

1. 測定過程中樣本和所有試劑在冰上放置,以免變性和失活。

2. 最好兩個人同時做此實驗,一個人比色,一個人計時,以保證實驗結果的準確性。

3. 由于提取液含有蛋白成分(約1mg/mL),故測定蛋白濃度時需要同時測定提取液的蛋白濃度。

4. 當樣本ΔA0.01時,可適當延長酶促反應時間或增大樣本量后測定,注意同步修改計算公式。

5. 當樣本ΔA>1A>1.5時,可將樣本用提取液適當稀釋后測定,注意同步修改計算公式。

實驗實例:

1、 0.0918g小鼠心臟加入1mL提取液和10μL試劑一進行冰浴勻漿,取上清用后,按照測定步驟操作,用96孔板測得ΔA=A2測定-A1測定)-A2對照-A1對照)=0.665-0.349-0.261-0.251=0.306按樣本質量計算MCS活性得:

MCS活性(U/g 質量)= 707.28×ΔA÷W =2357.60 U/g 質量。

2、 0.1186g霉菌加入1mL提取液和10μL試劑一進行冰浴勻漿,取上清后按照測定步驟操作,用96孔板測得ΔA=A2測定-A1測定)-A2對照-A1對照)=0.362-0.262-0.255-0.261=0.106按樣本質量計算MCS活性得:

MCS活性(U/g 質量)= 20.63×ΔA÷W =18.72 U/g 質量。

3、 0.1013g竹葉加入1mL提取液和10μL試劑一進行冰浴勻漿,取上清后按照測定步驟操作,用96孔板測得ΔA=A2測定-A1測定)-A2對照-A1對照)=0.291-0.252-0.261-0.249=0.027按樣本質量計算MCS活性得:

MCS活性(U/g 質量)=20.63×ΔA÷W =5.50 U/g 質量。

參考文獻:

[1] Maerker, C, et al. "Methylcitrate synthase from Aspergillus fumigatus. Propionyl-CoA affects polyketide synthesis, growth and morphology of conidia. " Febs Journal 272.14(2010):3615-3630.

[2] Watson, D., Lindel, D.L. & Fall, R. Pseudomonas aeruginosa contains an inducible methylcitrate synthase. Current Microbiology 8, 17–21 (1983).

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