一、抗原修復技術
原理:通過高溫(熱修復)或蛋白酶K處理,破壞交聯鍵,暴露被封閉的抗原表位。
方法:
熱修復:將切片浸入pH 6.0檸檬酸鹽緩沖液,微波加熱至95℃維持15分鐘。
酶消化:使用0.05%-0.1%胰蛋白酶37℃處理10-30分鐘(適用于疏松組織)。
二、優化固定條件
固定劑選擇:
固定劑 | 適用染色類型 | 缺點 |
4%多聚甲醛 | 常規免疫組化 | 強交聯,需抗原修復 |
乙醇/丙酮 | 細胞涂片、冰凍切片 | 穿透力差,易致細胞收縮 |
鋅鹽固定液 | 磷酸化蛋白保留 | 成本高,保存期短 |
固定時間控制:
小塊組織(<5mm3)固定不超過24小時,避免過度交聯。
三、穿透增強處理
去垢劑應用:0.1%-0.3% Triton X-100處理10分鐘,增加細胞膜通透性。
凍融循環:將組織反復凍融(-80℃?室溫),破壞致密結構(慎用于脆弱樣本)。
四、封閉內源性干擾物
內源性過氧化物酶:3% H?O?室溫處理10分鐘。
自發熒光:0.1% Sudan Black B乙醇溶液浸泡10分鐘(適用于醛基固定樣本)。
五、試劑與染色方案適配
抗體驗證:選擇經固定組織驗證的一抗(查閱文獻或說明書標注“IHC/IF validated”)。
染料適配:
核酸染料:優先選用抗固定型染料(如DAPI替代Hoechst)。
熒光標記:避免使用與自發熒光波長重疊的探針(如Cy5替代FITC)。
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