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Bis-Tris蛋白預制膠的使用方法通常包括以下幾個步驟，這些步驟可能會因不同的品牌和型號而略有差異，但總體流程大致相同：
一、準備工作
選擇合適的預制膠：根據實驗需求，選擇適當的Bis-Tris蛋白預制膠濃度和規格。
取出預制膠：從包裝袋中取出預制膠，并撕去底部的密封膠帶(通常為藍色或透明色)。
固定預制膠：將預制膠固定在電泳槽中，確保膠板與電泳槽的接觸面平整，且密封良好以防止漏液。
二、電泳緩沖液準備
準備電泳緩沖液：根據預制膠的說明，準備適量的電泳緩沖液。通常，Bis-Tris蛋白預制膠使用的是MOPS或MES緩沖系統，而非Tris-Glycine等其他電泳緩沖液。
加入電泳緩沖液：向內槽中加入足夠的電泳緩沖液，確保浸沒點樣孔；外槽中的電泳緩沖液應至少沒過電泳槽底部的陽極，但不可漫過膠板。
三、上樣
處理樣品：將蛋白樣品與Loading buffer按比例混合均勻，并根據需要進行加熱處理(如使蛋白變性)。
加樣：使用移液器將處理好的蛋白樣品加入預制膠的加樣孔中，注意避免槍頭戳破凝膠或過度插入梳孔造成漏液。同時，注意每個加樣孔的容量限制，以避免溢出。
四、電泳
設置電泳條件：根據預制膠的說明或實驗需求，設置合適的電泳電壓和時間。通常，Bis-Tris蛋白預制膠的電泳條件為100150V，電泳時間4060分鐘。
啟動電泳：將電泳槽插上電源線，并將電源線插頭插入電泳儀電源插孔。然后，選擇合適的電泳條件并啟動電泳儀。
觀察電泳過程：在電泳過程中，可以觀察溴酚藍指示帶的移動情況，以判斷電泳的進度和是否需要調整電泳條件。
五、凝膠取出與后續處理
電泳結束：當溴酚藍指示帶電泳至膠板底部或實驗預定位置時，結束電泳。
取出凝膠：關閉電泳儀并斷開電源后，從電泳槽中取出預制膠。使用撬具或刀片小心插入膠板之間的空隙，撬動膠板上、中、下三個位置，直至膠板完全分離。
凝膠處理：將有凝膠的膠板一側浸入水中(通常為蒸餾水)，貼著水面輕輕提起膠板，使凝膠從膠板上脫落。然后，將凝膠取出進行后續實驗，如染色、成像等。
六、注意事項
安全操作：實驗過程中應穿實驗服并戴一次性手套操作，確保個人安全。
避免污染：在操作過程中，避免電泳緩沖液、樣品等化學物質濺入眼睛或皮膚；同時，也要防止這些物質污染實驗器材和凝膠。
電泳條件調整：根據實驗需求和預制膠的說明，可以適當調整電泳電壓和時間以獲得最佳實驗結果。
凝膠保存：如果凝膠需要保存以備后續使用，應將其浸泡在適當的保存液中，并儲存在低溫條件下(如4℃)。
遵循以上步驟和注意事項，可以確保Bis-Tris蛋白預制膠的正確使用和實驗結果的準確性。
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