伯樂電泳槽的使用方法

伯樂電泳槽（如 1658001 和 1658003）是一種廣泛用于核酸（DNA、RNA）和蛋白質分離的實驗設備。以下將詳細介紹伯樂電泳槽的使用方法，從設備準備到實驗完成的每個步驟都涵蓋其中，以幫助實驗人員高效、安全地操作該設備。

一、設備準備

1.1 檢查設備

• 確保電泳槽的所有組件（凝膠托架、電極組件、緩沖液槽等）完整無損。

• 檢查電極線連接無破損，確保實驗安全。

• 確保實驗環境干燥，避免設備短路。

1.2 選擇緩沖液

根據實驗目標選擇適合的緩沖液：

• 核酸實驗：使用 TAE（Tris-Acetate-EDTA）或 TBE（Tris-Borate-EDTA）緩沖液。

• 蛋白質實驗：使用 SDS-Tris-Glycine 緩沖液。

二、凝膠制備

2.1 核酸實驗（瓊脂糖凝膠）

1. 準備瓊脂糖溶液：

• 根據目標片段大小，選擇適合的濃度（通常 0.8%-2%）。

• 例如：分離大片段 DNA（>1000 bp）用 0.8%-1% 的瓊脂糖；分離小片段 DNA（<500 bp）用 1.5%-2%。

• 稱取適量瓊脂糖粉末，加入緩沖液（如 TAE 或 TBE），攪拌均勻。

2. 加熱溶解：

• 在微波爐中加熱瓊脂糖混合液，直至溶解（無顆粒）。

• 冷卻至約 50℃。

3. 倒入凝膠托架：

• 將凝膠溶液倒入凝膠托架中，插入梳子（形成樣品槽），靜置約 20-30 分鐘直至凝膠固化。

2.2 蛋白質實驗（聚丙烯酰胺凝膠）

1. 選擇合適的預制膠或自制膠：

• 使用伯樂的 Ready Gel（貨號：1610150）預制膠，節省時間。

• 若自制，按照目標分離分子量配置分離膠和濃縮膠，澆注至 Mini-PROTEAN 電泳槽內。

2. 安裝凝膠：

• 將固化后的聚丙烯酰胺凝膠固定在伯樂電泳槽的凝膠夾上。

三、樣品準備

3.1 樣品處理

• 核酸樣品：

• 使用 DNA 上樣緩沖液（如 6X Loading Dye）與樣品混合。

• 緩沖液通常含有甘油或溴酚藍，可提高樣品密度并便于追蹤遷移進程。

• 蛋白質樣品：

• 使用 SDS 上樣緩沖液，將蛋白樣品變性處理（通常需 95℃ 水浴加熱 5 分鐘）。

• 加入染料（如溴酚藍）以便于電泳過程中觀察。

3.2 樣品加樣

1. 用加樣槍將樣品緩慢注入凝膠樣品槽，避免氣泡進入。

2. 在最后一個樣品槽中加入分子量標準 Marker（DNA Ladder 或蛋白質 Marker），以對比目標片段大小。

四、電泳運行

4.1 安裝電泳槽

1. 將凝膠托架安裝到電泳槽中，確保凝膠正確放置。

2. 加入緩沖液至液面，確保緩沖液覆蓋凝膠并接觸電極。

4.2 連接電源

1. 將電泳槽連接到伯樂 PowerPac 電源（如 1645050）。

2. 確保電極線紅色接正極，黑色接負極。

4.3 設置電壓和運行時間

• 核酸實驗：

• 設置電壓為 50-150 V，運行時間 30-90 分鐘。

• 根據 DNA 片段大小調整運行時間，染料需運行至凝膠 2/3 處。

• 蛋白質實驗：

• 設置電壓為 100-200 V，運行時間 30-60 分鐘。

4.4 運行監控

• 實驗過程中，觀察溴酚藍或其他染料的遷移情況。

• 定期檢查緩沖液液位，確保電泳過程中不會干涸。

五、實驗完成與結果處理

5.1 停止電泳

1. 關閉電源，斷開電極線。

2. 小心取出凝膠托架。

5.2 核酸實驗染色

1. 將瓊脂糖凝膠浸入染色液中（如 Ethidium Bromide（EB） 或 SYBR Green）。

• EB 染色：浸泡 15-30 分鐘后脫色。

• SYBR Green：快速染色，靈敏度更高。

2. 使用脫色液（如去離子水）清洗凝膠，去除背景染色。

5.3 蛋白質實驗染色

1. 將聚丙烯酰胺凝膠浸入染色液（如 考馬斯亮藍 或 銀染液）。

2. 根據染色液說明，完成染色和脫色步驟。

5.4 結果觀察

1. 使用伯樂的成像系統（如 Gel Doc EZ System，貨號：1708195）觀察凝膠條帶。

2. 分析條帶的分子量和樣品濃度，記錄實驗結果。

六、清潔與維護

6.1 清潔設備

1. 倒掉緩沖液，用去離子水清洗緩沖液槽。

2. 拆卸電極組件，用濕布擦拭干凈。

6.2 檢查組件

• 檢查電極線和電泳槽是否有損壞或老化。

• 如發現異常，及時更換或聯系供應商維修。

6.3 存放設備

• 將設備存放在干燥、無塵的環境中，避免電極組件長期接觸水分。

七、常見問題及解決方法

7.1 電泳條帶彎曲

• 原因：電場不均或緩沖液液位不足。

• 解決：檢查緩沖液覆蓋是否完，確保電泳槽水平放置。

7.2 條帶擴散

• 原因：運行時間過長或緩沖液溫度過高。

• 解決：縮短運行時間或更換冷卻緩沖液。

7.3 樣品未遷移

• 原因：電極線連接錯誤或電壓設置不當。

• 解決：檢查電極連接，確保正負極接線無誤。

總結

伯樂電泳槽操作簡單、高效，但需要嚴格遵守實驗規范，確保實驗結果準確無誤。以上使用方法適用于伯樂的各種電泳槽設備（如 1658001 和 1658003），如果在使用過程中遇到特殊問題，建議參考產品手冊或聯系技術支持團隊。通過規范操作，您將輕松實現核酸或蛋白質的精準分離與分析！