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功能基因高通量篩選解決方案

來源:上海優(yōu)寧維生物科技股份有限公司   2024年01月25日 11:17  

在生命系統(tǒng)中,基因的功能可通過系統(tǒng)性敲低、敲除或過表達來確定,此實驗方法被稱為功能基因組學,目前是眾多生物學研究領域的關鍵發(fā)現(xiàn)工具,如藥物靶點鑒定、耐藥性、宿主-病原互作和生物通路分析等。因此,功能基因高通量篩選文庫應運而生,今天聚焦96/384孔板陣列核酸片段文庫,來看看這類文庫的高通量篩選流程及其多重應用方向。

 

陣列核酸片段文庫

將siRNA、sgRNA與自動化、生物分析、高內(nèi)涵數(shù)據(jù)捕獲和生物統(tǒng)計分析相結(jié)合,篩選表型讀數(shù)可在標準設備上進行,如酶標儀;也可選用多種終點分析法,如比色、熒光或發(fā)光測定來評估細胞增殖、蛋白分泌、報告基因活性和凋亡誘導等情況。

 

1.產(chǎn)品特點

類型豐富:提供人、小鼠全基因組和各基因家族siRNA, sgRNA文庫

效果保證

①siRNA:每個基因提供4條siRNA,保證mRNA水平上每個基因的4條siRNA中有3條有≥75%沉默效率

②sgRNA:每個基因提供3條sgRNA,保證每條sgRNA都能成功編輯目標位點

應用廣泛:適用于多種表型篩選,避免不同狀態(tài)細胞間的旁分泌作用

定制靈活:可挑選感興趣基因定制

 

ON-TARGETplus siRNA顯著降低脫靶效應,同時保持高水平的靶基因敲低作用

 

在人的原代CD4T細胞中進行Cas9 RNP電轉(zhuǎn),每個基因使用一條預制sgRNA,流式細胞術分析對應蛋白敲除效果

 

2.篩選操作流程

 

siRNA文庫反向轉(zhuǎn)染流程示意圖

 

3.應用方向

文庫篩選應用方向檢測方法篩選結(jié)果期刊
全基因組文庫HIV感染相關宿主蛋白[1]IF + automated Image Express Micro (IXM) microscope(成像) + Metamorph Cell Scoring softwareProgram(圖像分析)鑒定超過250個HIV依賴因子Science. 2008
甲型流感、西尼羅河病毒、登革熱病毒感染相關宿主因子[2]鑒定超過120個相關宿主因子,其中IFITM蛋白能夠有效抵抗病毒感染Cell. 2009
去泛素化酶亞庫調(diào)節(jié)雌性激素信號轉(zhuǎn)導相關基因--乳腺癌[3]qPCRPSMD14的敲低有效抑制TFF1(雌激素信號活性指標)Oncogene. 2023
穩(wěn)定SNAI2表達的基因--乳腺癌[4]Western blotUSP20的敲低能夠顯著降低SNAI2表達水平Genes Dev. 2020
調(diào)節(jié)蛋白質(zhì)內(nèi)穩(wěn)態(tài)相關基因--癌癥和神經(jīng)系統(tǒng)疾病[5]S9.6 immunostaining signal + MetaXpress® softwareUSP11的敲低有效降低解旋酶穩(wěn)態(tài)水平,從而減少R-loop溶解Nat Commun. 2021
細胞纖毛生成相關基因--細胞周期[6]纖毛生成百分比USP8的敲低顯著誘導纖毛生成Nat Commun. 2018
調(diào)節(jié)炎性小體活動相關基因--炎癥[7]ELISAUSP50的敲低顯著減少IL-1β分泌,是炎癥小體活化的正向調(diào)節(jié)因子FEBS Lett. 2017
成藥基因組亞庫調(diào)節(jié)parkin募集的相關基因--帕金森[8]Hochest stain + InCell Analyzer 1000結(jié)合小分子化合物篩選,發(fā)現(xiàn)UBE2N能夠調(diào)節(jié)有絲分裂途徑中的parkin募集和下游事件J Biol Chem. 2020
表觀遺傳亞庫肉瘤相關皰疹病毒感染宿主限制因子[9]qPCRKDM2B,NuRD和 Tip60-R 可通過抑制 RTA 的表達抑制 KSHV 的裂解周期PLoS Pathog. 2020
蛋白激酶亞庫嚴重急性呼吸綜合癥中病原宿主相關因子[10]Berthold Mithras LB 940 + CellTiter 96 AQueous篩選得到28個抗病毒作用基因,10個促病毒作用基因J Virol. 2015

*這里以siRNA文庫為例,更多sgRNA文庫應用案例可自行檢索

 

4.優(yōu)寧維文庫好物推薦

文庫名稱(人*siRNA(基因數(shù))sgRNA(基因數(shù))
Genome~1900019037
Druggable Genome75538340
Cell Cycle Regulation131 /
Cytokine Receptors116 /
Deubiquitinating Enzymes98 /
DNA Damage Response240 /
Drug Targets47863686
Epigenetics835 /
G Protein-Coupled Receptors390390
Ion Channels349417
Membrane Trafficking140/ 
Nuclear Receptors49/ 
Phosphatases254256
Proteases478527
Protein Kinases709746
Transcription Factors15251580
Tyrosine Kinases88 /
Ubiquitin Conjugation Subset 188 /
Ubiquitin Conjugation Subset 2115/ 
Ubiquitin Conjugation Subset 3387 /
Ubiqutin Enzymes688738 
定制文庫≥5個基因≥6個基因

*還可提供小鼠相關文庫,可聯(lián)系您身邊的優(yōu)寧維銷售進一步咨詢

 

Reference

1.Brass, Abraham L et al. “Identification of host proteins required for HIV infection through a functional genomic screen.” Science (New York, N.Y.) vol. 319,5865 (2008): 921-6. doi:10.1126/science.1152725

2.Brass, Abraham L et al. “The IFITM proteins mediate cellular resistance to influenza A H1N1 virus, West Nile virus, and dengue virus.” Cell vol. 139,7 (2009): 1243-54. doi:10.1016/j.cell.2009.12.017

3.Yang, Penghe et al. “PSMD14 stabilizes estrogen signaling and facilitates breast cancer progression via deubiquitinating ERα.” Oncogene, 10.1038/s41388-023-02905-1. 29 Nov. 2023, doi:10.1038/s41388-023-02905-1

4.Li, Wenyang et al. “Deubiquitinase USP20 promotes breast cancer metastasis by stabilizing SNAI2.” Genes & development vol. 34,19-20 (2020): 1310-1315. doi:10.1101/gad.339804.120

5.Jurga, Mateusz et al. “USP11 controls R-loops by regulating senataxin proteostasis.” Nature communications vol. 12,1 5156. 15 Sep. 2021, doi:10.1038/s41467-021-25459-w

6.Kasahara, Kousuke et al. “EGF receptor kinase suppresses ciliogenesis through activation of USP8 deubiquitinase.” Nature communications vol. 9,1 758. 22 Feb. 2018, doi:10.1038/s41467-018-03117-y

7.Lee, Jae Young et al. “The deubiquitinating enzyme, ubiquitin-specific peptidase 50, regulates inflammasome activation by targeting the ASC adaptor protein.” FEBS letters vol. 591,3 (2017): 479-490. doi:10.1002/1873-3468.12558

8.Scott, Helen L et al. “A dual druggable genome-wide siRNA and compound library screening approach identifies modulators of parkin recruitment to mitochondria.” The Journal of biological chemistry vol. 295,10 (2020): 3285-3300. doi:10.1074/jbc.RA119.009699

9.Naik, Nenavath Gopal et al. “Epigenetic factor siRNA screen during primary KSHV infection identifies novel host restriction factors for the lytic cycle of KSHV.” PLoS pathogens vol. 16,1 e1008268. 10 Jan. 2020, doi:10.1371/journal.ppat.1008268

10.de Wilde, Adriaan H et al. “A Kinome-Wide Small Interfering RNA Screen Identifies Proviral and Antiviral Host Factors in Severe Acute Respiratory Syndrome Coronavirus Replication, Including Double-Stranded RNA-Activated Protein Kinase and Early Secretory Pathway Proteins.” Journal of virology vol. 89,16 (2015): 8318-33. doi:10.1128/JVI.01029-15

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