實驗步驟：

1.種板數：根據你摸索的，或者查閱文獻確定你需要的種板濃度，根據種板濃度對細胞懸液進行稀釋，通常細胞增殖實驗每孔加入約1000-2000個細胞100ul，細胞毒性實驗每孔加入約5000～10000個細胞100ul（具體每孔所用的細胞的數目，需根據細胞的大小，細胞增殖速度的快慢等決定）。

2.種板：以96孔板為例，96孔板橫向是1-12的數字，縱向是A-H，可做多個實驗組，每組設置4-6個復孔，同時設置空白組，最邊緣孔加入PBS緩沖液減少蒸發帶來的影響，然后將細胞置于37℃ 5%CO2細胞培養箱中培養12-24 h。

3.加藥及加藥后孵育時間：觀察細胞細胞貼壁良好，吸出各孔培養基，實驗組加入含不同濃度藥物的培養基，空白組加入不含藥物培養基，然后將96孔板在37℃ 5% CO2空氣的細胞培養箱中孵育適當時間，根據不同實驗細胞需求選擇適當的孵育條件和時間。

4.加入CCK-8：兩種方法，每孔直接加入10ul的CCK-8溶液,或者配置成含10%CCK-8溶液的培養基以換液的形式加入,注意加入過程中避免產生氣泡，可以將槍頭浸入培養液中緩慢加入。

5.加入CCK-8后孵育時間：將加完CCK-8的培養板放入37°C 5%CO2 培養箱中孵育1-4h，CCK-8試劑加入后孵育時間也需要自己摸索，隨著時間的增加，OD值就會增大。可以在0.5h、1.0h、2.0h分別測OD值，把OD值控制在1.0左右。

6.測OD值：將96孔板取出，酶標儀檢測各孔在450nm波長處的OD值，分析處理數據，繪制增殖曲線。

7.結果分析：

A．細胞存活率：將各測試孔的OD值減去本底OD值（空白組）各重復孔的OD值取平均數±SD。

細胞存活率% =(加藥細胞OD/對照細胞OD)×100%。

B. 求出T/C = 50% 時的藥物濃度(IC50)及T/C = 10%時的藥物濃度(IC90)。