很多小伙伴都疑惑，細胞被支原體污染后的特征是什么？如何鑒別細胞被支原體污染了？今天，小愛帶大家分享兩個支原體污染的案例，共同探尋一下細胞被支原體污染后的特征。

圖1 感染支原體的EBTr（牛胚氣管細胞）

01 牛胚氣管細胞

先來觀察一下被支原體污染的牛胚氣管細胞（圖1），由成纖維樣逐漸變得類上皮樣；質膜鋪展，潰爛；輪廓不清，邊界模糊。再看右圖，細胞處于邊增殖邊凋亡的狀態，漂浮凋亡細胞過多。

圖2 感染支原體的HT1080（人纖維肉瘤細胞）

02 人纖維肉瘤細胞

再觀察一下被支原體污染的人纖維肉瘤細胞HT1080（圖2），由上皮樣逐漸變得類成纖維樣，胞體細長，和前面的牛胚氣管細胞形態變化剛好相反；偽足伸長，出現明顯的拉絲現象，表明細胞可能在“痛苦”地遷移。使用了支原體殺除試劑（abs9375），清除了支原體以后，如右圖所示，細胞逐漸恢復了上皮樣形態，拉絲減少。

圖3 細胞膜上的支原體集落

03 支原體集落

給大家展示貼附在細胞膜上的支原體集落（圖3），支原體是目前已知最小的原核生物，直徑大小在0.1-0.3um，比細菌還要小。支原體可在培養液、細胞膜、細胞內增殖。單個支原體需要借助于電鏡才可以觀察到具體形態，圖中膜上的黑點為支原體集落。細胞背景干凈，形態沒有大的變化，但質膜粗糙，布滿黑點。

主要特征
細胞被支原體污染
1增殖減慢；
2上清液澄澈；
3背景干凈；
4細胞形態異常（拉絲、鋪展）；
5更換新的培養液細胞狀態沒有恢復。

細胞被支原體污染后的共性表現為細胞增殖減慢、上清液澄澈、背景干凈，這3點可以明確地排除真、細菌污染。值得一提的是，當給細胞的營養體系不佳時，細胞也會表現出形態異常，所以，我們可以給細胞更換新的培養液，如果細胞也沒有恢復正常形態，此時判斷細胞極有可能被支原體“附身”了。

上述的判斷方法需要豐富的經驗積累，日常細胞培養中，我們還可以用PCR擴增試劑盒檢測細胞是否有支原體污染。

圖4 支原體檢測試劑盒（PCR法）    
產品優勢：
? 本試劑盒檢測靈敏度高，可檢測低至20個拷貝的支原體；
? 實驗時間短，3小時即可完成；
? 已在多個支原體品種上做過驗證。

表1 產品組分表

該試劑盒檢測到的支原體類別

M.fermentans(發酵支原體)、M.hyorhinis(豬鼻支原體)、M.arginini(精氨酸支原體)、M. Orale(口腔支原體)、M.hominis(人型支原體)、M.bovis(牛支原體)、M.pneumoniae(肺炎支原體)、M.pirum(梨支原體)、M.gallisepticum(雞毒支原體)、Ureaplasma spp(解脲支原體)、A.laidlawii(萊氏無膽甾原體)等11種以上支原體。

作用原理

試劑盒使用的混合引物是針對支原體16s rRNA序列的保守區域設計的特異性引物，可直接使用細胞培養液作為PCR模板，特異性擴增支原體DNA。

使用方法
支原體檢測試劑盒（PCR法）
01樣品準備
取適量待檢細胞培養上清于潔凈的PCR管中（如果是血清樣本，可用 Mycoplasma Free Water 稀釋），利用PCR儀95℃熱處理5min后作為模板；

02PCR體系配制
每次實驗需設置陰性對照（將1μL待檢樣品換成等量的Mycoplasma Free Water）與陽性對照（在1μL待檢樣品中加入0.5μL Positive Control后一起作為Template），實驗時戴一次性口罩與手套，謹慎操作，防止操作不當引入外源支原體污染；

03PCR程序設置

04凝膠電泳
取10μL PCR產物，使用1%瓊脂糖凝膠進行電泳檢測；

05結果分析
每次實驗通過與陰性對照、陽性對照檢測結果比較確認樣品支原體污染情況，陽性條帶大小500bp左右。如陰性對照檢測結果中有條帶很有可能是PCR體系中出現污染，建議重新實驗確認結果。如有必要，也可對PCR產物進行常規測序，以確定具體的支原體種屬。
如果您的細胞真的“中鏢”了，也不要怕，我們的支原體殺除試劑為您的細胞披荊斬棘，保駕護航。

圖5 支原體清除劑（abs9375-200uL×5）

產品優勢

1）特異性清除培養基中的支原體；
2）只需要3-6天，便可以有效清除支原體；
3）活性成分為多肽類，不會產生耐藥性；
4）對細胞幾乎無毒性，在100多種細胞上進行過驗證，包括但不限于 HEK293、Hela、MCF-7、MRC-5、NIH-3T3、CCC-ESF、CHO-S、CHO-K1、CHO-DG44、H295R、HL-60、K562、MDA-MB-231、SP2/0、T47D、BM和BV2等；
5）廣譜性，可替代雙抗，可以清除常見的革蘭氏陰性和陽性菌；
6）可直接加入血清、培養基中，用于清除支原體污染；

使用方法

1）收到貨后，將試劑管瞬時離心(3000rpm，3～5s)保存。
2）推薦稀釋比例為1:1000。例如10mL的培養基加入10μL的Treatment混勻。
3）棄去舊的培養基，用PBS將細胞清洗干凈，再加入含有支原體清除劑的新鮮培養基，1天1次， 連續處理3天；或者2天1次，連續處理5～6天。若細胞污染非常嚴重時，需延長處理時間。
4）若細胞對支原體清除劑敏感，或生長明顯被抑制時，請參考以下推薦參數。
表3

5）處理完畢后，加入新鮮培養基，培養基中可添加支原體預防劑（abs9376）預防支原體再次污染。

本期講解就到這里了

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