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懸浮細胞是指細胞生長不依賴支持物表面，在培養(yǎng)液中呈懸浮狀態(tài)生長，如淋巴細胞。在實驗室經(jīng)常會遇到懸浮細胞的轉(zhuǎn)染，其和貼壁細胞轉(zhuǎn)染有很大的不同。
懸浮細胞轉(zhuǎn)染通常可能遇到：
1.效率明顯低于貼壁細胞。
2.細胞不易培養(yǎng)，死亡率高。
3.轉(zhuǎn)染試劑毒性大，細胞死亡加劇這三種問題，為了提高懸浮細胞的轉(zhuǎn)染效率，可以使用毒性較小的非脂質(zhì)體的轉(zhuǎn)染試劑，也可以使用電轉(zhuǎn)染方法，提高細胞轉(zhuǎn)染效率，電擊對細胞有一定的損傷，最好選用具有細胞膜修復(fù)功能的電轉(zhuǎn)染試劑，可以將電擊對細胞的傷害降到。
轉(zhuǎn)染過程中，操作步驟一定要謹慎。
以24孔板siRNA轉(zhuǎn)染為例
1.提前1天細胞種植
懸浮細胞：采用對數(shù)生長期的細胞，數(shù)量為常規(guī)培養(yǎng)細胞數(shù)的1/3進行轉(zhuǎn)染實驗。如某細胞常規(guī)培養(yǎng)的細胞數(shù)是6×10^5，那么就用2×10^5的細胞進行轉(zhuǎn)染。
2.轉(zhuǎn)染過程
⑴取0.67μg(50pmol)的siRNA，加入一定量無血清稀釋液，充分混勻，制成RNA稀釋液，終體積為25μl。
注意：無血清稀釋液建議采用OPTI-MEM、無血清DMEM或1640。
⑵取1μl的Entranster-R4000，然后加入24μl無血清稀釋液體，充分混勻，制成Entranster-R4000稀釋液，終體積為25μl。室溫靜置5分鐘。
⑶將Entranster-R4000稀釋液和RNA稀釋液充分混合（可用振蕩器振蕩或用加樣器吹吸10次以上）混合，室溫靜置15分鐘。轉(zhuǎn)染復(fù)合物制備完成。
⑷將50μl轉(zhuǎn)染復(fù)合物滴加到有0.45ml全培養(yǎng)基（可含10%血清和抗生素）的細胞上，前后移動培養(yǎng)皿，混合均勻。
注意：對本試劑，采用含血清的全培養(yǎng)基有助于提升轉(zhuǎn)染效率。
⑸轉(zhuǎn)染后6小時觀察細胞狀態(tài)，如狀態(tài)良好可不必更換培養(yǎng)基，繼續(xù)培養(yǎng)24-96小時得到結(jié)果。
注意：1.siRNA轉(zhuǎn)染后，繼續(xù)培養(yǎng)24-72小時在mRNA水平得到結(jié)果，繼續(xù)培養(yǎng)24-96小時在蛋白水平得到結(jié)果。mRNA轉(zhuǎn)染后，根據(jù)需要在24小時后得到結(jié)果。
2.在部分實驗室，由于血清和培養(yǎng)條件等差異，轉(zhuǎn)染后鏡下培養(yǎng)基中可能出現(xiàn)少量黑點狀沉淀，為轉(zhuǎn)染試劑和血清中蛋白結(jié)合產(chǎn)物，不影響轉(zhuǎn)染結(jié)果和細胞狀態(tài)，可通過換液除去。
如遇轉(zhuǎn)染效果不佳，可采取優(yōu)化方案對實驗進行優(yōu)化：
1.優(yōu)化轉(zhuǎn)染條件包括：轉(zhuǎn)染試劑的用量、DNA密度、細胞密度、試劑和DNA混合孵育時間等等。
2.同時細胞污染也是造成細胞死亡，轉(zhuǎn)染效率低下的一大原因。轉(zhuǎn)染細胞用的質(zhì)粒必須保證無菌。分享一個小秘訣：將提完質(zhì)粒后或者提的最后一步，用75％乙醇沉淀，這樣就除菌了。
3.轉(zhuǎn)染用的質(zhì)粒首先要保證數(shù)量，一般為2μg以上。如果質(zhì)粒純度不夠或者含有細菌LPS或其他對細胞有毒害作用的物質(zhì)，需要對質(zhì)粒進行純化和濃縮。
4.一般進行轉(zhuǎn)染的細胞應(yīng)該處于對數(shù)生長期。如果是貼壁細胞的話，貼壁率應(yīng)該在70-80%；如果是懸浮細胞的話，應(yīng)該是6×10^5個/孔（24孔板），一般是轉(zhuǎn)染前一天換液，轉(zhuǎn)染前用無血清培養(yǎng)基或PBS洗細胞一次。
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