Western Blot（WB）又名Western Bloting、Western、蛋白質印跡法、免疫印跡試驗，Western Blot 基本原理：首先利用SDS-PAGE對蛋白質樣品進行分離，然后轉移到固相載體上，固相載體以非共價鍵形式吸附蛋白質，且能保持電泳分離的多肽類型及其生物學活性不變。轉移后的膜就稱為一個印跡（blot）,用于對蛋白質的進一步檢測。印跡首先用蛋白溶液處理以封閉膜上剩余的疏水結合位點，而后用所要研究的蛋白質的抗體（一抗）處理，印跡中只有待研究的蛋白質與一抗特異結合形成抗原抗體復合物，而其它的蛋白質不能與一抗結合，這樣清洗除去未結合的一抗后，印跡中只有待研究的蛋白質的位置上結合著一抗。處理過的印跡進一步用適當標記的二抗處理，二抗是指一抗的抗體，處理后，帶有標記的二抗與一抗結合形成抗體復合物可以指示一抗的位置，即是待研究的蛋白質的位置。

     WB實驗檢測結果背景過高可能是由很多因素引起的：封閉不*、顯色過度、洗滌不充分、轉移緩沖液或設備有污染、抗體稀釋度不對或抗體不純。

1、 封閉不*

一抗或二抗只要結合到膜上，就會顯色。為了避免非特異性的結合，應用封閉液孵育膜，使所有的空白位點都被封閉蛋白占有。NC膜推薦封閉液是3%的明膠，室溫孵育1小時。如果想要低溫封閉的話，可以用3%的BSA。PVDF膜推薦的封閉液是5%的脫脂奶粉。

傳統的牛奶/蛋白類封閉劑會形成較厚的、粘粘的蛋白層，導致與抗體發生非特異性相互作用，增加背景；另一方面，牛奶中本身含有的磷酸化蛋白會干擾蛋白磷酸化檢測。

2、顯色過度

顯色時間的長短取決于蛋白條帶的數目以及你想要的靈敏度。如果膜在顯色液中放置太久，背景就會偏高。應當在蛋白條帶清晰可見，而背景幾乎沒有或很少時，將膜及時取出。

3、 洗滌不充分

在封閉以及抗體孵育之后，至少要洗兩次膜，每次5分鐘。去污劑的濃度不要太高，否則會把抗原從膜上洗下來。

4、 轉移緩沖液或設備污染

使用清潔劑將轉印槽內外*清洗干凈，海綿墊也一定要認真清洗，臟的海綿墊通常是污染的最主要原因。另外，每次轉膜時的緩沖液都要是新鮮配制的。

5、 抗體稀釋度不正確

一抗的稀釋度應根據抗體來源和經驗來決定。一般來說，以1:100-1:1000來稀釋血清或組織培養上清，以1:1000-1:10000來稀釋腹水或超免疫動物的血清。抗體稀釋度不夠，會產生非特異的結合，帶來高背景。

6、 二抗不純

沒有交叉吸附過的二抗可能會與膜上的其他蛋白相互作用，產生雜帶。這種情況可以選用單克隆的二抗。