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STEMCELL mTeSR™1 人ES/iPS細胞培養基
  • STEMCELL mTeSR™1 人ES/iPS細胞培養基
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貨物所在地:天津天津市

更新時間:2024-07-13 10:12:14

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STEMCELL mTeSR™1 人ES/iPS細胞培養基是一款專為培養人類多能干細胞(hPSC)設計的無血清、無飼養層細胞培養基。其配方和經過優化的成分組合,確保了hPSC的長期、穩定且高效的增殖,同時保持了細胞的原始特性和分化潛能。柏萊源生物提供該培養基,歡迎咨詢!

mTeSR™1(85850)——超多文獻支持的“金標準"

STEMCELL mTeSR™1 人ES/iPS細胞培養基是一款專為培養人類多能干細胞(hPSC)設計的無血清、無飼養層細胞培養基。其配方和經過優化的成分組合,確保了hPSC的長期、穩定且高效的增殖,同時保持了細胞的原始特性和分化潛能。

在mTeSR™1中維持培養的人ES和iPS細胞:

•表型一致,核型正常

• 高表達多種未分化多能干細胞的基因(例如OCT4,SSEA-3,SSEA-4, TRA-1-60, TRA-1-81和NANOG)

• 可形成包含三個胚層細胞的畸胎瘤

• 可定向分化成為所有三個胚層的成熟細胞類型(例如,中胚層,內胚層和外胚層)

• 從飼養層依賴的培養體系轉換時不需要適應期(例如沒有細胞產率低的時期)

• 兼容生物反應器和懸浮培養

實驗數據:

未分化的人ES細胞(圖1A和圖2A)和iPS細胞(圖3A和圖4A)在mTeSR™1中培養,形成緊密的多細胞集落,具有清晰的邊界。細胞間緊密的堆積起來,具有高核質比,且核仁顯著。健康的集落會無縫的融合起來,在中心有多層細胞,在相襯顯微鏡下觀察, 成緊密的細胞簇。mTeSR™1中培養的集落在Vitronectin XF™上生長時更緊密且更圓(圖1和圖3),而使用Corning® Matrigel®生長的集落則較為分散且形狀不規則。 在這兩種基質上,自發性分化的特征表現為失去集落邊界的完整性,一個集落內有不規則的細胞形態區域,或者出現其他的細胞類型等(圖1B,圖2B,圖3B)。

STEMCELL mTeSR™1 人ES/iPS細胞培養基

圖1. 在 Vitronectin XF™上和mTeSR™1中培養的人ES細胞的形態特征。(A)良好傳代時的未分化的人ES細胞(H1和H9) 。(B) 兩個未分化的H1集落中間出現自發性分化的區域(橙色圈中)。圖像使用了三種放大倍率:20X,40X和400X。

STEMCELL mTeSR™1 人ES/iPS細胞培養基

圖2. 在Corning® Matrigel®和mTeSR™1中培養的人ES的形態特征。(A) 良好傳代時期未分化的人ES細胞(H1和H9)。(B)在一個未分化的H1集落旁邊自發性分化的區域(橙色圈中)。圖像使用了三種放大倍率: 20X, 40X和400X。

STEMCELL mTeSR™1 人ES/iPS細胞培養基

圖3. 在Vitronectin XF™和mTeSR™1中培養的人iPS細胞的形態特征。(A) 良好傳代時期未分化的人iPS 細胞細胞(WLS-4D1和WLS-1C)。(B) 在兩個未分化WLS-1C集落中間出現的自發性分化區域 (橙色圈中)。 圖像使用了三種放大倍率:20X, 40X和400X。

STEMCELL mTeSR™1 人ES/iPS細胞培養基

圖4. 在Corning® Matrigel®和mTeSR™1中培養的人iPS細胞的形態特征。(A) 良好傳代時期未分化的人iPS細胞(WLS-4D1和WLS-1C)。(B) 未分化WLS-1C集落邊界旁的自發性分化區域(橙色圈中)。圖像使用了三種放大倍率:20X,40X和400X。

產品特征:

1. 無血清配方:不含動物源成分,降低了病毒和微生物污染的風險,提高了實驗的穩定性和可靠性。

2. 無飼養層細胞:無需額外的飼養層細胞,簡化了實驗操作,降低了成本。

3. 高效增殖:mTeSR™1培養基能夠有效促進hPSC的增殖,同時保持細胞的原始特性和分化潛能。

4. 長期穩定性:經過長時間的實驗驗證,mTeSR™1培養基在多次傳代后仍能維持hPSC的穩定性和活性。

5. 易于使用:方便的包裝和清晰的使用說明,使得該培養基在實驗室中易于使用和管理。

應用領域:

STEMCELL mTeSR™1 人ES/iPS細胞培養基廣泛應用于人類多能干細胞的基礎研究、藥物篩選、再生醫學和細胞治療等領域。它能夠幫助研究人員更好地理解hPSC的生物學特性,推動相關領域的科學研究和技術發展。

相關文獻:

1. Ludwig TE et al. (2006) Derivation of human embryonic stem cells in defined conditions. Nat Biotechnol 24(2): 185–7.

2. Ludwig TE et al. (2006) Feeder-independent culture of human embryonic stem cells. Nat Methods 3(8): 637–46.

3. Yu J et al. (2007) Induced pluripotent stem cell lines derived from human somatic cells. Science 318(5858): 1917–20.

4. Masaki H et al. (2007) Heterogeneity of pluripotent marker gene expression in colonies generated in human iPS cell induction culture. Stem Cell Res 1(2): 105–15.

5. Sun N et al. (2009) Feeder-free derivation of induced pluripotent stem cells from adult human adipose stem cells. Proc Natl Acad Sci USA 106(37): 15720–5


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