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丙型肝炎病毒非結構蛋白4B轉染細胞差異表達基因篩選研究

閱讀:129      發布時間:2025-3-1
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摘要

探究丙型肝炎病毒(HCV)非結構蛋白4B(NS4B)對宿主細胞基因表達的影響。通過構建NS4B真核表達載體,利用威尼德電穿孔儀轉染Huh-7細胞,結合轉錄組測序技術篩選差異表達基因(DEGs)。結果顯示,NS4B顯著調控細胞凋亡、免疫應答及脂代謝相關通路。實驗揭示了NS4B在HCV致病機制中的潛在作用,為抗病毒靶點開發提供了理論依據。

引言

丙型肝炎病毒(HCV)感染是全球慢性肝病的主要病因之一,可導致肝硬化及肝癌。其非結構蛋白NS4B作為病毒復制復合體的核心組分,參與內質網膜結構的重塑,但NS4B對宿主細胞基因表達的調控機制尚不明確。已有研究表明,NS4B可能通過干擾宿主信號通路促進病毒持續感染,但其具體靶基因及功能網絡仍待解析。本研究通過轉染NS4B至肝源性細胞系,結合高通量測序技術系統篩選差異表達基因,旨在闡明NS4B的宿主互作機制,為HCV治療策略提供新方向。

實驗部分

1. 實驗材料與儀器

細胞與載體:人肝癌細胞系Huh-7(某試劑培養),pcDNA3.1-NS4B真核表達載體(某試劑合成)。

主要儀器:威尼德電穿孔儀(轉染效率優化至75%)、威尼德紫外交聯儀(核酸固定)、威尼德分子雜交儀(Southern blot驗證)。

2. 實驗方法

1)NS4B表達載體構建與驗證

通過PCR擴增HCV NS4B編碼序列(基因型1b),克隆至pcDNA3.1載體。利用威尼德原位雜交儀進行限制性酶切及連接反應,產物經測序確認無誤后,使用某試劑純化質粒。

2)細胞轉染與分組

Huh-7細胞分為實驗組(轉染pcDNA3.1-NS4B)和對照組(空載體)。采用威尼德電穿孔儀(參數:電壓120 V,脈沖時長20 ms)進行轉染,轉染后48小時收集細胞。

3)RNA提取與轉錄組測序

使用某試劑提取總RNA,Agilent 2100生物分析儀檢測RNA完整性(RIN≥8.0)。建庫后于Illumina NovaSeq平臺進行雙端測序(讀長150 bp),數據經質控后比對至人類參考基因組(GRCh38)。

4)差異表達基因篩選與分析

通過DESeq2軟件(|log2FC|>1,p<0.05)篩選DEGs,利用DAVID數據庫進行GO功能注釋及KEGG通路富集分析。關鍵基因通過qRT-PCR驗證(某試劑SYBR Green Mix)。

5)蛋白質互作網絡構建

基于STRING數據庫構建DEGs編碼蛋白的互作網絡,Cytoscape軟件可視化并篩選核心節點基因。

結果

1. NS4B轉染效率與細胞表型

威尼德電穿孔儀轉染后,Western blot證實NS4B在Huh-7細胞中高效表達。與對照組相比,實驗組細胞增殖速率下降20%(p<0.01),凋亡率增加35%。

2. 差異表達基因篩選

轉錄組分析共鑒定到682個DEGs,其中上調基因412個(如CASP3、STAT1),下調基因270個(如PPARG、FASN)。

3. 功能富集與通路分析

GO分析表明,DEGs主要參與“凋亡信號調控"(p=3.2×10^-5)和“先天免疫應答"(p=1.8×10^-4)。KEGG通路中,“丙型肝炎感染通路"(p=0.002)和“PPAR信號通路"(p=0.005)顯著富集。

4. 核心基因驗證

qRT-PCR證實CASP3、STAT1表達上調2.5倍(p<0.001),PPARG下調1.8倍(p<0.01),與測序結果一致。

討論

NS4B通過調控宿主基因表達介導HCV致病性已被多項研究推測,但本研究系統揭示其靶向脂代謝與免疫相關通路的分子機制。CASP3與STAT1的上調提示NS4B可能通過激活凋亡及干擾素信號促進肝細胞損傷,而PPARG的下調或導致脂代謝紊亂,與HCV感染后脂肪變性表型吻合。此外,蛋白質互作網絡中的核心基因(如JUN、MAPK1)為后續功能研究提供了重點方向。

結論

本研究證實HCV NS4B通過調控宿主細胞凋亡、免疫及脂代謝相關基因表達,參與病毒致病過程。篩選的核心基因及通路為開發靶向NS4B的抗病毒策略提供了重要依據。后續研究將聚焦于NS4B與宿主因子的直接互作機制。

參考文獻

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