摘要
多細胞因子（IL-2、TNF-α、IFN-γ）聯合HSV-TK/GCV基因系統對膀胱癌的協同抑制作用。通過體外細胞實驗及小鼠皮下移植瘤模型，驗證聯合治療對腫瘤增殖的抑制效果及免疫調節機制。結果顯示，聯合組較單一治療組顯著降低腫瘤體積（P<0.01），并激活CD8+ T細胞浸潤。
膀胱癌是泌尿系統常見惡性腫瘤，傳統化療易產生耐藥性且免疫抑制微環境限制療效。基因療法通過前藥轉換特異性殺傷腫瘤細胞，但單一基因治療存在靶向性不足及免疫激活有限等問題。多細胞因子可通過調節免疫微環境增強抗腫瘤效應，但其與基因的協同機制尚未明確。本研究設計靶向膀胱癌特異性抗原的遞送系統，聯合多細胞因子與HSV-TK/GCV系統，旨在通過直接殺傷與免疫激活雙重途徑抑制腫瘤進展。
細胞與動物：人膀胱癌細胞系T24、MB49；BALB/c裸鼠及C57BL/6小鼠（6周齡）。
試劑：某試劑（重組質粒pCDH-CMV-MCS-EF1-Puro）、某試劑（GCV前藥）、某試劑（ELISA檢測試劑盒）。
儀器：威尼德電穿孔儀（轉染效率>80%）、威尼德紫外交聯儀（DNA固定）、威尼德分子雜交儀（蛋白印跡分析）。
2.1 質粒構建與轉染
構建靶向EpCAM的多細胞因子融合質粒（IL-2/TNF-α/IFN-γ），并與HSV-TK基因共轉染至T24細胞。使用威尼德電穿孔儀（參數：電壓120 V，脈沖時長20 ms），篩選穩定轉染株（Puromycin 2 μg/mL，72 h）。
2.2 體外細胞毒性實驗
將轉染細胞分為四組：對照組、細胞因子組、HSV-TK/GCV組、聯合組。加入GCV（10 μM）處理48 h，CCK-8法檢測細胞存活率，流式細胞術分析凋亡（Annexin V/PI雙染）。
2.3 動物模型建立
將MB49細胞接種于C57BL/6小鼠右脅皮下（5×10^6個/只），腫瘤體積達100 mm3后隨機分組（n=8），分別注射PBS、細胞因子、HSV-TK/GCV及聯合治療。每3天監測腫瘤體積（公式：V=0.5×長徑×短徑2）。
2.4 免疫組化與流式分析
取瘤組織石蠟切片，CD31抗體檢測血管生成，CD8+ T細胞標記分析浸潤程度。脾臟單細胞懸液經某試劑染色，威尼德流式細胞儀檢測T細胞亞群比例。
聯合治療顯著抑制腫瘤增殖
體外實驗中，聯合組細胞存活率（23.4±3.1%）顯著低于單一治療組（細胞因子組：58.7±4.2%；HSV-TK組：45.6±5.1%，P<0.01）。
小鼠模型中，聯合組腫瘤體積較對照組減少78.3%（第21天，197.2±21.5 mm3 vs. 912.4±89.7 mm3）。
免疫微環境重塑
聯合組瘤內CD8+ T細胞比例升高至42.1±3.8%（對照組：8.5±1.2%），血管密度降低56%。
本研究證實多細胞因子可通過激活Th1型免疫反應增強HSV-TK/GCV的旁觀者效應。IL-2促進T細胞增殖，TNF-α誘導腫瘤血管壞死，IFN-γ上調MHC-I表達，三者協同克服了單一基因療法的免疫逃逸缺陷。威尼德電穿孔儀的高效轉染為基因遞送提供了技術保障。未來需優化靶向載體以減少脫靶毒性。
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