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1.產品介紹
CNBr Focurose 4FF是經過溴化氰活化后含有氰酸酯基團的快流速純化介質,適用于偶聯蛋白質、多肽、核酸等含有氨基的生物分子。在生物醫藥純化工藝中經過反復的驗證,得到了廣泛的應用。
特點如下:
a.應用廣泛,可適用于偶聯含氨基的生物類大分子。
b.多點偶聯,簡單、靈活、快速、有效,能高效的維持生物分子的生物學活性及穩定性。
c.流速快、產率高、易于放大。
表1:介質性能參數
基質 | 高度交聯4%的瓊脂糖 |
粒徑范圍 | 45-165µm |
平均粒徑 | 90µm |
結合載量 | 30mg(Trypsinogen)/ml(介質) |
pH穩定性 | 3-11(長期) 2-11(短期) |
最大流速 | 700cm/h |
操作壓力 | ≤0.3MPa |
貯存溶液 | 100%丙酮 |
貯存溫度 | 4-8℃ |
2.偶聯條件
a.(A液)清洗
取適量的沉降膠(0.83g清洗完成后約為1.0ml),用5倍體積的A液將介質重懸,5min后將溶液抽干。重復此步驟5次。
備注:此步驟用于激活介質,要保證A液的清洗體積要充足、清洗時間固定在0.5h左右(時間太久介質上面的基團會水解)。
b.配基溶液的制備
將要偶聯的生物分子用B液溶解或者將生物分子置換到B液中(生物分子濃度為1-10mg/ml,建議為5mg/ml)。
備注:確保偶聯時的pH和鹽濃度與B液一致。
c.偶聯
將清洗完的介質和準備好的樣品按等比例(體積比)混合,室溫條件下溫和混勻3-4h。確定偶聯成功(通過測定偶聯前后生物分子含量確定偶聯效率)后,將溶液抽干。
備注:偶聯建議在室溫條件下偶聯3-4h。對于不穩定的配基,建議4-8℃偶聯過夜。
d.(C液)清洗
用5倍體積的C液將偶聯后的介質重懸,再將溶液抽干。再重復此步驟3次。
備注:此步驟用于清洗介質中殘留的生物分子,清洗要*。
e.封閉
用5倍體積的C液進行重懸,室溫條件下溫和混勻3-4小時后,將溶液抽干。
備注:此步驟用于封閉介質上面的基團,室溫條件下溫和混勻3-4小時即可。
f.(D液和E液)清洗
用5倍體積的D液將封閉后的介質重懸,5min后將溶液抽干;再用5倍體積的E液將介質重懸,5min后將溶液抽干。重復此步驟3次。
備注:此步驟用于酸堿清洗掉偶聯不夠緊密的生物分子。
g.保存
用5倍體積的純化水將介質重懸后抽干,再用5倍體積的20%乙醇將介質重懸后抽干,最后用20%乙醇浸泡保存。
備注:此步驟用于保存介質,避免微生物生長。
h.溶液配制
A液:0.001MHCl、0.5M NaCl,調節pH 3.0,4-8℃保存(A液使用前要進行預冷處理)。
B液:0.2M NaHCO3、0.5 M NaCl,調節pH 8.3(如果要偶聯的生物分子為IgG時,pH=8.5-9.0),室溫保存。
C液:0.1M Tris-HCl,調節pH 8.3,室溫保存。
D液:0.05M Tris-HCl、0.5M NaCl,調節pH 8.5,室溫保存。
E液:O.05M 甘氨酸、0.5MNaCl,調節pH 3.5,室溫保存。
F液:1.0M NaCl,室溫保存。
3.清洗
清洗后可以去除一些強結合性物質(例如一些強結合的蛋白、變性蛋白、脂類等),從而達到恢復介質的優良性能(例如載量、流動性、柱效等)。
建議每使用5次后進行一次清洗,具體清洗頻率需根據純化的初始樣品的潔凈度進行調整。
⑴常規清洗
a.用5-10倍柱體積的純化水沖洗。
b.用5-10倍柱體積的D液沖洗。
c.用5-10倍柱體積的E液沖洗。
d.用5-10倍柱體積的F液沖洗。
e.用5-10倍柱體積的純化水沖洗。
f.用5-10倍柱體積的20%乙醇沖洗后保存。
⑵劇烈清洗
a.用2-5倍柱體積0.2%非離子型去污劑沖洗后,立即用5-10倍柱體積純化水沖洗。
b.用2-5倍柱體積6M鹽酸胍沖洗后,立即用5-10倍柱體積純化水沖洗。
c.用5-10倍柱體積的20%乙醇沖洗后保存。
備注:劇烈清洗條件是否適用主要取決于偶聯的生物分子的穩定性,采用此條件清洗前,建議先做一個小規模的預實驗驗證生物分子的穩定性。
4.應用案例
案例一
案例二
5.常見問題
表2:常見問題及解決方案
問題 | 可能原因 | 解決方案 |
偶聯效率較低 | 1.B液鹽濃度或pH不對 | 檢測B液配制是否正確 |
2.偶聯時間不夠 | 延長偶聯時間 | |
3.預活化填料不合適 | 嘗試其它種類的預活化填料 | |
純化時目標物不與介質結合 或結合量較低 | 1.上樣量過載 | 降低上樣量 |
2.上樣速度過快 | 降低上樣流速 | |
3.蛋白或脂類在介質中聚集 | 及時有效地清洗介質 | |
4.樣品在儲存或上樣過程中失活 | 正確儲存待純化樣品以維持樣品的活性 | |
5.配基和目標物結合比例比較低 | 嘗試加大偶聯時配基濃度 | |
6.配基在偶聯或清洗過程中降解 | 檢測配基在偶聯或清洗中的穩定性 | |
洗脫時沒有收集到目標物 或只收集到少量目標物 | 1.目標物沒有與介質結合或結合量較少 | 降低上樣流速并檢查介質的結合能力 |
2.洗脫條件不合適 | 更改相應洗脫條件或增強洗脫液的洗脫能力 | |
3.目標物在洗脫液條件下出現聚集沉淀 | 檢測目標物在洗脫液條件(鹽濃度和pH等)下的穩定性 | |
目標物純度較低
| 1.樣品沒有經過前處理 | 樣品上柱前必須要經過離心或過濾 |
2.樣品粘度過高 | 用平衡液適當的稀釋樣品,降低粘度。 | |
3.洗雜不* | 加大洗雜體積直至基線平穩并與平衡液一致 | |
4.雜質蛋白或脂類在介質中聚集沉淀 | 及時有效地清洗介質 | |
5.洗脫條件不佳,洗脫速度太快、梯度太陡。 | 調整洗脫條件 | |
6.目標物出現降解 | 檢測目標物的穩定性 | |
7.柱料裝填效果不佳 | 重新裝填或購買 | |
8.雜質出現非特異性吸附 | 適當選擇添加劑降低非特異性吸附 | |
9.分離柱頂部有較大儲樣體積 | 重新裝柱或降低儲樣體積 | |
10.介質中有微生物生長 | 介質使用完后,請及時正確保存介質 | |
介質載量下降 | 1.上樣速度過快 | 降低上樣流速 |
2.蛋白或脂類在介質中聚集,導致載量下降。 | 及時清洗介質 | |
3.使用次數過多,配基出現脫落 | 重新偶聯新的介質 | |
4.樣品在儲存或上樣過程中失活,不能較好的與配基結合 | 正確儲存待純化樣品以維持樣品的活性 | |
色譜峰上升緩慢 | 介質裝填過緊 | 重新裝柱 |
色譜峰拖尾 | 介質裝填太松 | 重新裝柱 |
柱床有裂縫或干涸 | 出現泄露或大體積氣泡引入 | 檢查管路是否有泄露或氣泡,重新裝柱 |
液流較慢
| 1.蛋白或脂類聚集 | 及時清洗介質或濾膜 |
2.蛋白沉淀在介質中 | 調整平衡液和洗脫液組分,以維持目標物的穩定性和介質的結合效率 | |
3.分離柱中微生物生長 | 所用試劑必須經過過濾和脫氣; 樣品上柱前必須離心或過濾 |
6.訂購信息
表3:訂購信息表
產品 | 規格(ml) | 貨號 |
CNBr Focurose 4FF | 25 | HZ1001-2 |
CNBr Focurose 4FF | 100 | HZ1001-2 |
CNBr Focurose 4FF | 500 | HZ1001-2 |
CNBr Focurose 4FF | 1000 | HZ1001-2 |
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