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細胞中的RNA可以分為信使RNA、轉運RNA和核糖體RNA三大類，不同組織總RNA提取的實質就是將細胞裂解，釋放出RNA，并通過不同方式去除蛋白，DNA等雜質，終獲得高純度RNA產物的過程。

RNA提取技術流程

細胞裂解

異硫氰酸胍/苯酚法（TRIZOL）

這是一種傳統的RNA提取方法，適用于大部分動植物材料，但對于次生代謝產物較多的植物材料提取RNA效果較差。

該法應用非常廣泛，適用于包括動物組織、微生物、培養細胞等在內的各類動物性材料，同時還適用于次生代謝物較少的植物性材料，如幼苗、幼葉等。該法主要應用在動物組織和培養細胞的RNA提取中。

胍鹽/β-巰基乙醇法

RNA提取技術適用于各種不同動物材料和次生代謝物少的植物材料。

在這種方法中，胍鹽使細胞充分裂解，β-巰基乙醇作為蛋白的變性劑在實驗全程中可以抑制RNaseA的活性，保護RNA不被降解。

其它方法

有些植物材料多糖多酚含量較高，如植物果實，番茄的葉子等，有些植物木質化程度較高，如根莖等組織。針對這類材料本公司推出了一種全新的植物總RNA提取試劑，該試劑特別適合于從富含多糖、多酚、淀粉的材料中提取純度高、完整性好的總RNA，有關的具體步驟將在分論中詳細介紹，實驗者可根據自己的需要進行選擇。

1.樣品處理

從各種不同來源樣品（如細菌、酵母、血液、動物組織、植物組織和培養細胞）,或同一來源樣品的不同組織（如植物幼嫩葉片、成熟根、莖等）中提取高質量的RNA，因細胞結構及所含的成分不同，樣品預處理的方式也各有差異。

樣品的要求

使用新鮮的樣品或取樣后立即在低溫（-20℃或-70℃）冷凍保存的樣品，避免反復凍融，因為這會導致提取的RNA降解和提取量下降。

樣品預處理方式

植物材料-液氮研磨

動物材料-勻漿、液氮研磨

細菌-溶菌酶破壁

酵母-液氮研磨、玻璃珠處理、混合酶破壁

硅基質吸附法

隨著實驗方法的改進，現已發展出一種采用吸附材料純化核酸的方法。目前較常見的有：硅基質吸附材料、陰離子交換樹脂和磁珠等。硅基質吸附材料因其具有可特異吸附核酸，使用方便、快捷、不使用有毒溶劑如苯酚等優點，成為核酸純化的S選。

RNA提取技術純化及獲得

純化要求

RNA樣品中不應存在對酶（如逆轉錄酶）有抑制作用的有機溶劑和過高濃度的金屬離子。避免其它生物大分子如蛋白質、多糖和脂類分子的污染。排除DNA分子的污染。

純化方法及沉淀

方法一：有機溶劑抽提法

抽提

在使用RNA提取試劑進行RNA提取時，常使用進行抽提，以去除蔗糖、蛋白等雜質，并促進水相與有機相的分離，從而達到純化RNA的方法。在本公司的提取RNA的產品中，與TRIzol同型試劑法及其衍生試劑盒。

沉淀

抽提RNA后，一般采用了異丙醇或乙醇來沉淀水相RNA。加入0.6倍水相體積的異丙醇或與水相等體積的異丙醇，室溫沉淀20-30分鐘，高速離心，可獲得RNA沉淀。

溶解沉淀

加入適量RNase-free ddH2O溶解RNA沉淀。

纖維組織

心臟/骨骼肌等纖維組織提取RNA的關鍵在于*破碎組織。這些組織細胞密度低，單位重量的組織中RNA含量較低，建議增加起始量。此外，一定要在液氮中將組織*磨碎。

蛋白/脂肪含量較高的組織

腦或植物脂肪含量高，酚抽提后，上清含白色絮狀物。必須用再次對上清進行抽提。

RNA提取技術純度檢測---分光光度計法

通過OD260/280來檢測RNA純度，OD260/230作為參考值。

OD260/280在1.9-2.1之間，可以認為RNA的純度較好；

OD260/280值小于1.8，則表明蛋白雜質較多；

OD260/280值大于2.2，則表明RNA已經降解；

OD260/230值小于2.0，則表明裂解液中有異硫氰酸胍和β-巰基乙醇法殘留。

注意：如果用TE溶解或洗脫RNA，會使OD260/280值偏大。