氧化型低密度脂蛋白（OX-LDL）

人源性低密度脂蛋白（通過超速離心分離(1.019-1.063g/cc)純化）在PBS溶液中用5μM Cu2SO4 （氧化劑）37℃ 氧化 20 小時所得。最終通過加入過量EDTA-Na2終止氧化反應。通過瓊脂糖凝膠電泳對不同的LDL的遷移率進行分析。氧化型LDL的遷移速度是普通LDL的2倍。這種氧化型的LDL被廣泛用于研究類脂化合物代謝作用，但細胞凋亡誘導實驗除外。細胞凋亡誘導可選本公司所產高氧化程度低密度脂蛋白進行實驗。

氧化型低密度脂蛋白（OX-LDL）

濃度: 2.0mg/ml（蛋白質）

包裝： 經膜過濾后在PH為7.4，含有1μM EDTA-Na2的PBS溶液中無菌保存；

來源： 銅離子氧化人源血漿LDL；

稀釋方式：PBS磷酸鹽緩沖液或細胞培養液；

注意事項：長時間的儲存后可能會產生沉淀，這種現象屬于正常情況。將溶液放入離心管中離心2分鐘將聚合物除去即可。氧化型LDL不穩定，實驗時最hao現用現配，采用新鮮配置工作液。

慢病毒感染快速指南

1. 將目的細胞按 30%匯合度接種到 24 孔板，約 3-5×104細胞數/孔，不同細胞因為細胞大小不同細胞數量會不同，快速指南以細胞數量為 5×104為例，加入 500uL wan全培養基進行細胞培養。

2. 接種后 12-20h 感染陰性對照慢病毒（接種細胞至病毒感染細胞時間不宜太長，否則細胞增殖影響細胞密度不利用后期抗性篩選）。

3.加病毒量計算方法：（細胞數×MOI 值/病毒滴度）×103=病毒量（uL），加病毒量見下表。同時加入 Polybrene，每孔加 0.25uL，濃度為 10mg/mL Polybrene，細胞培養液中終濃度為5ug/mL。

4.感染 16-20h 后更換培養基，棄去培養基，每孔加入 500uL 新鮮的培養基。

5.感染后 48-96h 顯微鏡觀察熒光。（注：如果 48h-96h 期間細胞匯合度達到 100%，請及時傳代培養）。

6.建議將 48 孔板細胞進行傳代，傳代 12 孔板，后繼續觀察熒光，根據細胞狀態和熒光細胞比例綜合判斷細胞感染最佳 MOI 值。一般選擇細胞生長良好，感染效率 80%左右的感染條件作為最佳感染條件。（注：100%熒光感染不一定為細胞最佳 MOI 值，因為可能會造成細胞慢病毒感染拷貝數太高，影響細胞狀態。