單克隆分離技術(shù)主要包括有限稀釋法、克隆環(huán)法和顯微操作法。有限稀釋法是通過將細(xì)胞懸液連續(xù)梯度稀釋,使最終在細(xì)胞培養(yǎng)板的一個孔中僅有1個細(xì)胞,再經(jīng)過兩周左右時間增殖,形成細(xì)胞群,再經(jīng)過驗證獲得穩(wěn)定克隆;克隆環(huán)法是通過在10-15cm的細(xì)胞培養(yǎng)皿中,將細(xì)胞接種低密度,使分散的單個細(xì)胞各自增殖成細(xì)胞群,用克隆環(huán)方式與周圍的細(xì)胞隔離開,通過胰酶消化,轉(zhuǎn)到新的孔板中繼續(xù)培養(yǎng)擴(kuò)增,并檢測驗證而獲得穩(wěn)定克隆;顯微操作法是借助顯微鏡,在放大的視野下挑取單細(xì)胞,再轉(zhuǎn)至培養(yǎng)孔中,逐漸擴(kuò)增獲得單克隆。
這三種方法有各自一定的局限性:有限稀釋法對懸浮細(xì)胞較為合適,但是實際中貼壁細(xì)胞的需求占絕大多少,而且很多細(xì)胞在極低密度下生長極慢甚至不能生長,無法進(jìn)行單細(xì)胞克隆;克隆環(huán)法不僅需要購買克隆環(huán),而且因為細(xì)胞數(shù)量較少時肉眼難辨,必須等到細(xì)胞數(shù)量擴(kuò)增到幾百時才能進(jìn)行分離,因此需要等待較長時間,而且操作步驟多、難度大,實驗人員通常需要有豐富經(jīng)驗;顯微操作法需要借助昂貴的特殊顯微鏡或?qū)⒊R?guī)顯微鏡搬至安全柜內(nèi)使用,操作難度加大,而且易造成細(xì)胞污染而前功盡棄。
單克隆分離方法:
a、在培養(yǎng)皿中制備飼養(yǎng)細(xì)胞(小鼠腹腔細(xì)胞)單層。
b、臨用前將2.0%瓊脂糖生理鹽水溶液與等量雙倍濃度的HT培養(yǎng)液混勻,配成1%瓊脂糖培養(yǎng)液,45℃水浴中溫育。
c、吸去平皿上層培養(yǎng)液,加入1%瓊脂糖培養(yǎng)液3ml,室溫10分鐘。
d、取雜交瘤細(xì)胞懸液1ml,加入1%瓊脂糖培養(yǎng)液1ml混勻,鋪于上層。
e、37℃、7.5%濕潤培養(yǎng)7-14天;克隆生長至2mm時,用毛細(xì)吸管吸出克隆,直接轉(zhuǎn)種于含有飼養(yǎng)細(xì)胞的24孔板,擴(kuò)大培養(yǎng)。
f、吸取上清,檢測抗體,陽性孔可繼續(xù)克隆化,或擴(kuò)大培養(yǎng)、凍存。