使用方法
樣品測定:
1. 樣品處理
①血清、血漿、尿液、腦脊液樣本:從待測樣本中分理出的血清或血漿不應有溶血,直接檢測,如超過線性范圍,用生理鹽水稀釋后檢測。
②組織、細胞等樣本:組織或細胞可以使用PBS或貝博的Western及IP細胞裂解液等進行勻漿或裂解。
勻漿或裂解組織時,組織重量占勻漿液或裂解液的比例應為10%;
對于細胞,每106 個細胞使用0.1ml裂解液或勻漿液。勻漿或裂解后,1600g離心10min,取上清用于后續測定。
勻漿或裂解等樣品制備步驟宜在冰浴或4℃進行操作。
樣品準備完畢后可以用BCA蛋白濃度測定試劑盒測定蛋白濃度,以便于后續計算單位蛋白重量組織或細胞內的MDA含量。
2. 試劑配制:
TBA工作液的配制: 稱取適量TBA,用TBA稀釋液配制成濃度為0.68%的TBA工作液。TBA工作液需溶解后再使用,可以加熱到60-70℃促溶,并可通過反復劇烈Vortex促溶。配制好的TBA工作液4℃避光保存,至少3-4個月內有效。
3. MDA檢測工作液的配制:臨檢測前,根據待測定的樣品數(含對照),參考下表新鮮配制適量的MDA檢測工作液。
4. 稀釋標準品:
取適量標準品用恰當溶液稀釋至1、2、5、10、20、50μM(如果進行簡易快速檢測,標準品直接稀釋10μM)。
注意:待測樣品為血清、血漿時,標準品宜用生理鹽水稀釋;待測樣品由勻漿液、裂解液、PBS獲得時,標準品宜用相同溶液稀釋。其原則是保證空白管、標準管、測定管具有可比性。
5. 樣品測定:
離心管或其它適當容器內加入0.1ml勻漿液、裂解液、PBS、生理鹽水等適當溶液作為空白對照加入0.1ml 上述不同濃度標準品用于制作標準曲線,加入0.1ml樣品用于測定;隨后加入4.14mlMDA檢測工作液。
注意:待測樣品為血清、血漿時,標準品宜用生理鹽水稀釋;待測樣品由勻漿液、裂解液、PBS獲得時,標準品宜用相同溶液稀釋。
在帶蓋試管中按下表配制檢測反應體系:
6. 混勻, 加蓋,95℃水浴煮沸40min,加熱時務必注意避免液體暴沸濺出。如果使用加熱塊(Heat block)進行加熱注意用重物壓緊離心管蓋;如果使用沸水浴,則需使用可把蓋子鎖死的離心管或螺旋蓋離心管,或用Parafilm封住離心管口,用針頭刺一小孔。和準確的加熱方法是使用帶有熱蓋并可以加熱金屬浴。
7. 水浴或流水冷卻至室溫。
8. 在3000g離心15分鐘或4000g離心10分鐘。
9. 取上清,蒸餾水調零,用分光光度計或酶標儀檢測532nm或535nm處吸光值。如果用分光光度計,比色杯光徑應為1cm,加入的上清量因根據比色杯的最小量程而定;如果用酶標儀,96孔板每孔應加200μl上清液。
如果不方便測定532nm或535nm的吸光度,也可以測定530-540nm之間的吸光度。
結果計算:
對于血漿、血清或尿液等樣品可以直接根據標準曲線計算;也可以簡易快速檢測方法,采用如果進行簡易快速檢測,直接以10μM標準品進行計算,獲得MDA的摩爾濃度。
對于細胞、或組織樣品,計算出樣品溶液中的MDA含量后,可以通過單位重量的蛋白含量或組織重量等來表示最初樣品中的MDA含量,例如μmol/mg蛋白或μmol/mg組織。
簡易快速血清、血漿、尿液等液體樣品中MDA含量計算公式:
血清中MDA含量(umol/L)
=(測定管吸光度-空白管吸光度)÷(標準管吸光度-空白管吸光度)×10 × 樣品測試前稀釋倍數
簡易快速細胞、組織樣品中MDA含量計算公式:
組織細胞中MDA含量(umol/mg)
=(測定管吸光度-空白管吸光度)÷(標準管吸光度-空白管吸光度)× 10 ÷ 樣品蛋白濃度(mg/ml)
參考取樣量:
血清(漿)尿液取0.1ml;
低密度脂蛋白懸液取0.1~0.2 ml。
食用油取0.03ml;
細胞懸液細胞上清0.1~0.2 ml。
肝組織、心肌、肌肉組織等,取5%或10%勻漿0.1~0.2 ml較好。