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NK細胞活性測定
閱讀：1495 發布時間：2018-12-19NK細胞活性測定：LDH法實驗方法原理 活細胞的胞漿內含有LDH。正常情況下，LDH不能透過細胞膜，當細胞受到NK細胞的殺傷后，LDH釋放到細胞外。LDH 可使乳酸鋰脫氫，進而使NAD還原成NADH，后者再經遞氫體吩嗪二甲酯硫酸鹽（PMS）還原碘硝基氯化四氮唑（INT），INT 接受H＋被還原成紫紅色甲月贊類化合物。在酶標儀上用490nm比色測定。
實驗材料 YAC-1細胞
試劑、試劑盒 Hank's液RPMI1640*培養液乳酸鋰乳酸鈉硝基氯化四氮唑吩嗪二甲酯硫酸鹽Tris-HCl緩沖液NP-40TritonNAD試劑盒
儀器、耗材 酶標儀鑷子篩網紗布離心機培養板
實驗步驟
1、LDH基質液的配制
乳酸鋰5×10-2mol/L
硝基氯化四氮唑（INT） 6.6×10-4mol/L
吩嗪二甲酯硫酸鹽（PMS） 2.8×10-4mol/L
氧化型輔酶Ⅰ（NAD） 1.3×10-3mol/L
將上述試劑溶于0.2mol/L的Tris-HCl緩沖液中（pH8.2）
2、靶細胞的傳代（YAC-1細胞）
實驗前24h將靶細胞進行傳代培養。應用前以Hank's液洗3次，用RPMI1640*培養液調整細胞濃度為4×105個/mL。
3、脾細胞懸液的制備（效應細胞）
無菌取脾，置于盛有適量無菌Hank's液的小平皿中，用鑷子輕輕將脾磨碎，制成單細胞懸液。經200目篩網過濾，或用4層紗布將脾磨碎，或用Hank's液洗2次，每次離心10min（1000r/min）。棄上清將細胞漿彈起，加入0.5mL滅菌水20秒，裂解紅細胞后再加入0.5mL2倍Hank’s液及8mLHank’s液，1000rpm，10min離心，用1mL含10%小牛血清的RPMI1640*培養液重懸，用1%冰醋酸稀釋后計數（活細胞數應在95%以上），用臺酚蘭染色計數活細胞數（應在95%以上），后用RPMI1640*培養液調整細胞濃度為2×107個/mL。
4、NK細胞活性檢測
取靶細胞和效應細胞各100μL（效靶比50：1），加入U型96孔培養板中；靶細胞自然釋放孔加靶細胞和培養液各100μL，靶細胞大釋放孔加靶細胞和1％NP40或2.5%Triton各100μL；上述各項均設三個復孔，于37℃、5%CO2培養箱中培養4h，然后將96孔培養板以1500r/min離心5min，每孔吸取上清100μL置平底96孔培養板中，同時加入LDH基質液100μL，反應3min，每孔加入1mol/L的HCl30μL，在酶標儀490nm處測定光密度值（OD）。
按下式計算NK細胞活性，受試樣品組的NK細胞活性顯著高于對照組的NK細胞活性，即可判定該項實驗結果陽性。
反應孔OD－自然釋放孔OD
NK細胞活性（%）＝ ────────────────── ×100%
大釋放孔OD－自然釋放孔OD
四、數據處理及結果判定
NK細胞活性需進行數據轉換，X＝Sin-1 ，式中P為NK細胞活性，用小數表示，然后再進行方差分析，在進行方差分析時，需按方差分析的程序先進行方差齊性檢驗，方差齊，計算F值，F值< F0.05，結論：各組均數間差異無顯著性；F值≥F0.05，P≤0.05，用多個實驗組和一個對照組間均數的兩兩比較方法進行統計；對非正態或方差不齊的數據進行適當的變量轉換，待滿足正態或方差齊要求后，用轉換后的數據進行統計；若變量轉換后仍未達到正態或方差齊的目的，改用秩和檢驗進行統計。
收起
注意事項
1. 靶細胞和效應細胞必須新鮮，細胞存活率應大于95％。
2. 比色時環境溫度應保持恒定。
3. LDH基質液應臨用前配制。
4. 在一定范圍內，NK細胞活性與效靶比值成正比。一般效靶比值不應超過100。