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DNA提取流程圖：

實驗步驟：

(1)實驗開始前將RNA提取液于65℃水浴鍋中預熱，離心管中加入ME(巰基乙)，(10mL加80ul，50mL中加入300ul)

(2)取約0.8g菌絲體(液體培養獲得的菌絲用真空抽濾即可！固體培養就更好說了)，在液氮中迅速磨成精細粉末，裝入50mL離心管，按1g材料8mL的量加入預熱的RNA提取液，顛倒混勻

(3)65℃水浴3-10min，期間混勻2-3次

(4)加入等體積的酚(注意是酸酚pH4.5)，異戊(25:24:1)抽提(10,000rpm,4℃,5 min)

(5)取上清，等體積的，異戊(24:1)抽提(10,000rpm,4℃,5 min)

(6)加入1/4V體積10M LiCl溶液，4℃放置6h以上(或過夜)

(7)10,000rpm，4℃離心20min

(8)棄上清，用500ul SSTE溶解沉淀

(9)酚異戊(25:24:1)抽提兩次，異戊(24:1)抽提1次(10,000rpm,4℃,5min)

(10)加2V體積的無水乙，在-70℃冰箱沉淀30min以上

(11)12,000rpm，4℃離心20min

(12)棄上清，沉淀用70%酒精漂洗一次，干燥

(13)加200ul的DEPC處理水溶解

(14)用非變性瓊脂糖凝膠電泳和紫外分光光度計掃描檢測RNA的質量

操作步驟：

1. 勻漿處理：

a.組織將組織在液氮中磨碎，每50-100mg組織加入1ml TRIzol，用勻漿儀進行勻漿處理。樣品體積不應超過TRIzol體積10℅。
b.單層培養細胞直接在培養板中加入TRIzol裂解細胞，每10cm2面積(即3.5cm直徑的培養板)加1ml，用移液器吸打幾次。TRIzol的用量應根據培養板面積而定，不取決于細胞數。TRIzol加量不足可能導致提取的RNA有DNA污染。
c.細胞懸液 離心收集細胞，每5-10×106動物、植物、酵母細胞或1×107細菌細胞加入1ml TRIzol，反復吸打。加TRIzol之前不要洗滌細胞以免mRNA降解。一些酵母和細菌細胞需用勻漿儀處理。

2.將勻漿樣品在室溫（15-30℃）放置5分鐘，使核酸蛋白復合物分離。

3.可選步驟：如樣品中含有較多蛋白質，脂肪，多糖或胞外物質（肌肉，植物結節部分等）可于2-8℃10000×g離心10分鐘，取上清。離心得到的沉淀中包括細胞外膜，多糖，高分子量DNA，上清中含有RNA。處理脂肪組織時，上層有大量油脂應去除。取澄清的勻漿液進行下一步操作。

4. 每使用1ml TRIzol加入0.2ml，劇烈振蕩15秒，室溫放置3分鐘。

5. 2-8℃10000×g離心15分鐘。樣品分為三層：底層為黃色有機相，上層為無色水相和一個中間層。RNA主要在水相中，水相體積約為所用TRIzol試劑的60℅。

6. 把水相轉移到新管中，如要分離DNA和蛋白質可保留有機相，進一步操作見后。用異丙沉淀水相中的RNA。每使用1ml TRIzol加入0.5ml異丙，室溫放置10分鐘。

7. 2-8℃10000×g離心10分鐘，離心前看不出RNA沉淀，離心后在管側和管底出現膠狀沉淀。移去上清。