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手持式藻類熒光測量儀（探頭式）
閱讀：2413 發布時間：2020-6-24
AYP-C100手持式藻類熒光測量儀（探頭式）是一款用于快速、測量水體葉綠素熒光參數的手持式熒光儀。它配備了浸入式光學探頭，可直接插到要測量的水體、懸濁液或培養溶液中進行測量。AquaPen 具備*的敏感度，可檢測0.5μg Chl/L的葉綠素熒光，可以檢測浮游植物濃度極低的自然水體，可用于野外和實驗室測量。
AYP-C100手持式葉綠素熒光測量儀采用調試式熒光測量技術，可設置多種參數，方便測量多種植物葉綠素熒光。外觀小巧，方便攜帶，設計新穎，操作簡單，經濟耐用，精度高穩定性好。
應用領域
適用于光合作用研究和教學，植物及分子生物學研究，農業、林業，生物技術領域等。研究內容涉及光合活性、脅迫響應、農藥藥效測試、突變等。
· 植物光合特性和代謝紊亂篩
· 生物和非生物脅迫的檢測
· 植物抗脅迫能力或者易感性研究
· 代謝混亂研究
· 長勢與產量評估
· 植物——微生物交互作用研究
· 植物——原生動物交互作用研究
典型樣品
· 地表結皮
· 地衣、苔蘚
· 表層水體藻類
· 其它
功能特點：
- 結構緊湊、便攜性強，LED光源、檢測器、控制單元集成于僅手機大小的儀器內，重量僅180g
- 功能強大，是葉綠素熒光技術的結晶產品，具備了大型熒光儀的所有功能，可以測量所有葉綠素熒光參數
- 內置了所有通用葉綠素熒光分析實驗程序，包括兩套熒光淬滅分析程序、3套光響應曲線程序、OJIP–test等
- 高時間分辨率，可達10萬次每秒，自動繪出OJIP曲線并給出26個OJIP–test參數
- 探頭可直接插入水體中測量，簡便快捷
- 可配備GPS模塊，輸出待時間戳和地理位置的葉綠素熒光參數圖表
- FluorPen軟件功能強大，可下載、展示葉綠素熒光參數圖表，還可實現遙控功能
- 配置靈活，可選配藍牙通訊或USB通訊
- 可選配野外自動監測式FluorPen，防水防塵設計
工作原理
利用調制式熒光測量技術，采用LED光源，選擇儀器內置的給光方案測量并計算葉綠素熒光的各種參數。
實驗過程和測量參數
· Ft：瞬時葉綠素熒光、暗適應完成后Ft＝Fo
· QY：光量子效率，表示光系統II 的效率，等于Fv/Fm(暗適應完成的樣品)或Fv’/Fm’ (光適應完成的樣品)
· OJIP：葉綠素熒光瞬時OJIP曲線是反應光合作用過程中植物生理時間過程的重要信號。
· NPQ：非光化學淬滅，表示光合作用中葉綠素吸收光能后以熱形式散失掉的部分。
· 光曲線：Qy對不同光強的適應曲線。
· 可選配GPS模塊
技術參數
- 測量參數包括F0、Ft、Fm、Fm’、QY_Ln、QY_Dn、NPQ、Qp、Rfd、Area、Mo、Sm、PI、ABS/RC等50多個葉綠素熒光參數，及3種給光程序的光響應曲線、2種熒光淬滅曲線、OJIP曲線等
- OJIP–test時間分辨率為10µs（每秒10萬次），給出OJIP曲線和26個參數，包括F0、Fj、Fi、Fm、Fv、Vj、Vi、Fm/F0、Fv/F0、Fv/Fm、Mo、Area、Fix Area、Sm、Ss、N、Phi_Po、Psi_o、Phi_Eo、Phi–Do、Phi_Pav、PI_Abs、ABS/RC、TRo/RC、ETo/RC、DIo/RC等
- 3種給光程序光響應曲線，20多個葉綠素熒光參數
- 2種熒光淬滅曲線，20多個參數
- 測量光：0–0.03µmol(photons)/m².s可調
- 光化學光：0–1000µmol(photons)/m².s可調
- 飽和光：0–3000µmol(photons)/m².s可調
- 光源：標準配置藍光455nm，可根據需求配備紅光或白光
- 葉綠素熒光檢測限：0.5μg Chl/L
· 波長檢測范圍：697nm-750nm
· BOIS：可升級
· 通訊：USB或藍牙
· 存儲：4M
· 數據存儲：100,000個
· 顯示：2 x 8字符黑白液晶屏
· 鍵盤：密封防水設計2鍵
· 自動關機：5分鐘無操作
· 電源：4 AAA堿性電池或充電電池
· 電池壽命：持續測量70 h
· 低電報警
· 尺寸：120 x 57 x 30 mm; 4.7" x 2.2" x 1.2"
· 重量：180 g, 6.5 oz
· 操作條件：溫度：0 ～ 55 ºC；相對濕度：0 ～ 95 %非冷凝
· 存儲條件：溫度：-10 ～ +60 ºC；相對濕度：0 ～ 95 %非冷凝
· 軟件：FluorPen2.0，適用于Windows 2000、XP、7，實時顯示和遙控，植入GPS繪圖，EXCEL輸出
操作軟件與實驗結果
產地: 歐洲
參考文獻
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附：OJIP參數及計算公式
Bckg = background
Fo: = F50µs; fluorescence intensity at 50 µs
Fj: = fluorescence intensity at j-step (at 2 ms)
Fi: = fluorescence intensity at i-step (at 60 ms)
Fm: = maximal fluorescence intensity
Fv: = Fm - Fo (maximal variable fluorescence)
Vj = (Fj - Fo) / (Fm - Fo)
Fm / Fo = Fm / Fo
Fv / Fo = Fv / Fo
Fv / Fm = Fv / Fm
Mo = TRo / RC - ETo / RC
Area = area between fluorescence curve and Fm
Sm = area / Fm - Fo (multiple turn-over)
Ss = the smallest Sm turn-over (single turn-over)
N = Sm . Mo . (I / Vj) turn-over number QA
Phi_Po = (I - Fo) / Fm (or Fv / Fm)
Phi_o = I - Vj
Phi_Eo = (I - Fo / Fm) . Phi_o
Phi_Do = 1 - Phi_Po - (Fo / Fm)
Phi_Pav = Phi_Po - (Sm / tFM); tFM = time to reach Fm (in ms)
ABS / RC = Mo . (I / Vj) . (I / Phi_Po)
TRo / RC = Mo . (I / Vj)
ETo / RC = Mo . (I / Vj) . Phi_o)
DIo / RC = (ABS / RC) - (TRo / RC)