Cellulose DE-52 DEAE 纖維素 DE-52
（1）DE52纖維素。
（2）HCl；NaOH；0.01～0.05mol/L，pH8.0 PB；0.01mol/L，pH8.6 Tris-Cl；0.5mol/L NaCl。
（3）待純化標本：雜交瘤腹水或培養上清，免疫血清或飽和硫酸銨粗提品。
（4）1.5×50cm 層析柱；透析袋；紫外分光光度計及其他透析和層析所需的試劑和器材

Cellulose DE-52 DEAE 纖維素 DE-52

產品信息：  

    纖維素DE-52為中等堿性陰離子交換劑，柱層析用于吸附劑，用以分離提純多糖、肽、核苷酸、酶、血清組分和病毒等各種生物高分子。

纖維素DE-52提取法純化多克隆抗體

該法提取IgG簡便，既可小量提取，也可大量制備。

1．批量提取法 稱取DEAE-纖維素(DE52)50g，置于1000ml燒杯中，先以蒸餾水漂浮除去細顆粒，再經酸堿處理后，用0.01～0.05mol/L，pH8.0左右的磷酸鹽緩沖液(PB)平衡。將水分抽干，或用布氏濾斗(內放兩層濾紙)過濾，收集濕纖維素，以降低其離子強度。按1ml血清加濕重5g DE52，經過充分攪拌，置4℃吸附1h。上清液可再如此處理一次，即獲得較純的IgG。該法提取IgG簡便，既可小量提取，也可大量制備。

2．Tris-Cl離子交換層析法(Ion-exchange chromatography)

【材料和試劑】

（1）DE52纖維素。

（2）HCl；NaOH；0.01～0.05mol/L，pH8.0 PB；0.01mol/L，pH8.6 Tris-Cl；0.5mol/L NaCl。

（3）待純化標本：雜交瘤腹水或培養上清，免疫血清或飽和硫酸銨粗提品。

（4）1.5×50cm 層析柱；透析袋；紫外分光光度計及其他透析和層析所需的試劑和器材。

【操作步驟】   Cellulose DE-52 DEAE 纖維素 DE-52

（1）DE52纖維素的處理：DE52經酸、堿處理，0.01mol/L，pH8.6 Tris-Cl平衡。

（2）裝柱：將層析柱固定于滴定架上，柱底墊一圓形尼龍紗，出口接一細塑料管并關閉出水。將浸泡于0.01mol/L，pH8.6 Tris-Cl中的DE52沿玻璃棒倒入柱中，待DE52自然沉降3～5cm高時，吸除0.01mol/L，pH8.6 Tris-Cl，或松開出水口螺旋夾，控制流速1～2ml/min，同時連續加入DE52至所需高度。待DE52*沉降后，柱面放一圓形濾紙片。

（3）平衡：松開出水口螺旋夾，以0.01mol/L，pH8.6 Tris-Cl平衡，控制流速為15滴/min，待流出液與洗脫液之pH值達到*時，停止平衡。

（4）待提取樣品的準備：將蛋白裝入透析袋里，置4℃冰箱，對0.01mol/L pH8.6 Tris-Cl透析。

（5）加樣、洗脫與收集：用吸管吸去柱面液體，以毛細吸管沿柱壁加入樣品，樣品體積相當于柱床體積的1%～2%，蛋白濃度為50～70mg。啟開出水口螺旋夾使樣品緩慢進入柱床內，并用少量洗脫液清洗柱壁；待液體進入柱床后，以0.01mol/L，pH8.6 Tris-Cl洗脫，控制流速為14～16滴/min。分部收集器收集，紫外監測，或人工收集，以紫外分光光度計分別測定每管280nm OD值，描繪洗脫液峰。

（6）濃縮：將洗脫液的280nm OD上峰段與下峰段各管分別合并，裝入透析袋，以PEG濃縮至所需體積。

Tris-PO4離子交換層析法

該法在上述方法的基礎上稍加改良，即通過梯度洗脫，可用于血清中IgG和IgM的提取。

【材料和試劑】     

（1）DE52纖維素。

（2）待純化標本：雜交瘤腹水或培養上清，免疫血清或飽和硫酸銨粗提品。

（3）1.5×50cm 層析柱；透析袋及其他透析和層析所需的試劑和器材。

（4）梯度洗脫液包括：0.005 mol/L，pH8.6 Tris-PO4；0.055mol/L，pH6.0 Tris-PO4；.5mol/L，pH5.1 Tris-PO4。

【操作步驟】

（1）蛋白標本對0.005mol/L，pH8.6 Tris-PO4透析。

（2）DE52裝柱，并以0.005mol/L，pH8.6 Tris-PO4平衡。

（3）加樣，以0.005mol/L，pH8.6 Tris-PO4洗脫，紫外監測直至洗脫液280nm OD回到基線。這一步驟可除去血清中其他蛋白。

（4）以350ml 0.055mol/L，pH6.0 Tris-PO4洗脫，這一步驟可用于純化血清IgG和IgM。

（5）以125ml 0.055mol/L，pH6.0 Tris-PO4和125ml 0.5mol/L，pH5.1 Tris-PO4梯度洗脫，總量收集250ml；重復步驟（5）。

（6）根據280nm峰值合并蛋白峰，透析濃縮和保存同上。

用過的DE52可用0.01mol/L，pH8.6 Tris-Cl和0.5mol/L NaCl、0.01mol/L，pH8.6 Tris-Cl梯度洗脫回收。再用蒸餾水洗至中性，加入0.02%疊氮鈉于4℃保存備用。

性質用途

性狀：干燥細結晶或纖維狀

基質 高度交聯纖維素

配基 二乙基氨基乙基

配基密度 40μmol /ml

吸附載量 180mg HSA/ml

填料的顆粒大小 50μm

zui大流速 300cm/h

pH范圍 3-10，在位清洗時pH范圍可到2-11

化學穩定性 各種緩沖液及鹽，0.5M NaOH及醋酸，8M脲，6M鹽酸胍，乙醇，異丙醇等

物理穩定性 0.1M中性緩沖液中，120℃30min

層析柱裝填

1. 吸附性層析一般建議裝填高度為 10~15cm 高，分子篩建議裝填高度為60~90cm

1）組裝柱（如有需要連接裝柱器）。

2）取下下柱頭用裝柱緩沖液沖洗柱底適配器，排除篩網下面的氣泡，將下柱頭安裝

在層析柱底部，旋緊調整旋鈕，并在層析柱底部保留 1cm 左右高度的液體。

3）用裝柱緩沖液重懸介質，制成 50%~75%左右的介質懸浮液。

4）一次性將介質倒入柱管中，避免產生氣泡。

5）如連接有裝柱器，立即往裝柱器中緩慢加入裝柱緩沖液。將適配器或裝柱器上蓋

與層析系統相連接。

6）設定所需流速⁺，打開柱下端，啟動泵，進行壓柱。

7）柱床穩定后保持 30min 以上，關閉泵和底閥

8）如連接有裝柱器，移除裝柱器后連接適配器。

9）調節適配器，使其固定在膠面上 0.5~1cm 處，并保證適配器入口充滿液體。

10）打開底閥，連接泵，繼續用設定的流速（注意壓力不要超過 0.3Mpa）繼續壓柱

待膠面高度保持不變，標記此時膠面高度

11）暫停機器，關閉底閥，斷開柱頭入口，調低適配器至膠面下 3~5mm 處。封閉

上柱口，裝柱完成。

 

蛋白層析柱/蛋白純化柱（一端柱床可調，螺紋型）
內徑（mm）	耐壓（bar）	床層高度（mm）	床層體積（mL）	床層高度（mm）	貨號（玻璃）
10	5	100	0-7	0-100	LK10100
10		200	4月15日	55-200	LK10200
10		400	20-31	255-400	LK10400
10		600	35-47	455-600	LK10600
10		800	51-62	655-800	LK10800
10		1000	67-78	855-1000	LK101000
15	5	100	0-17	0-100	LK15100
15		200	9.7-35.3	55-200	LK15200
15		400	45-70	255-400	LK15400
15		600	80-106	455-600	LK15600
15		800	116-141	655-800	LK15800
15		1000	151-176	855-1000	LK151000
20	5	100	0-31	0-100	LK20100
20		200	17-63	55-200	LK20200
20		400	80-126	255-400	LK20400
20		600	143-188	455-600	LK20600
20		800	205-251	655-800	LK20800
20		1000	268-314	855-1000	LK201000
25	5	100	0-49	0-100	LK25100
25		200	27-98	55-200	LK25200
25		400	125-196	255-400	LK25400
25		600	223-294	455-600	LK25600
25		800	321-392	655-800	LK25800
25		1000	419-490	855-1000	LK251000
37	5	100	0-107	0-100	LK37100
37		200	59-214	55-200	LK37200
37		400	274-430	255-400	LK37400
37		600	488-644	455-600	LK37600
37		800	703-859	655-800	LK37800
37		1000	918-1074	855-1000	LK371000
50	5	100	0-196	0-100	LK50100
50		200	108-392	55-200	LK50200
50		400	500-785	255-400	LK50400
50		600	893-1177	455-600	LK50600
50		800	1285-1570	655-800	LK50800
50		1000	1678-1962	855-1000	LK501000