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內毒素檢測試劑盒說明
閱讀：5201 發布時間：2012-8-21| 提 供 商 | 河北奧美斯橡塑保溫材料有限公司 | 資料大小 | 196.6KB |
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顯色基質鱟試劑盒使用說明書 （終點顯色法，含偶氮化試劑）
【用途】顯色基質鱟試劑 （ Chromogenic End-point Tachypleus Amebocyte Lysate ,
CE TAL ）用于體外細菌內毒素的定量檢測，禁止以任何途徑進入機體。
【原理】鱟試劑為鱟科動物東方鱟的血液變形細胞溶解物的冷凍干燥品,鱟試劑中
含有Ｃ因子、Ｂ因子、凝固酶原、凝固蛋白原等。在適宜的條件下（溫
度，pH值及無干擾物質），細菌內毒素激活C 因子，引起一系列酶促反應，
激活凝固酶原形成凝固酶，凝固酶分解人工合成的顯色基質，使其分解為
多肽和黃色的對硝基苯胺（pNA，λmax = 405nm） 。在一定時間內，pNA的生成量與細菌 內毒素濃度成正相關，據此，可以定量供試品的內毒素濃度。同時， 對硝基苯胺（pNA）也可用偶氮化試劑染成玫瑰紅色 （λmax = 545nm），避免了供試品本身的顏色對405nm處吸收峰的干擾。
【檢測限】按反應時間不同可檢測0.1EU/ml-1 EU/ml和0.01EU/ml -0.1EU/ml兩個區
間（ 反應時間T 1 和T 2 見出廠檢驗報告） 。
【試劑盒組成】
細菌內毒素工作品，2支
鱟試劑， 1.7ml/支，2支
顯色基質，1.7ml/支，2支
偶氮化試劑1，10ml/支，2支
偶氮化試劑2，10ml/支，2支
偶氮化試劑3，10ml/支，2支
HCl （反應終止劑）， 50ml/瓶，1瓶
細菌內毒素檢查用水，50ml/瓶，2瓶
【貯存】陰涼處, *2-8℃,避光貯存。
【用法】
1 .材料和設備
1.1 試劑
鱟試劑、細菌內毒素工作品、顯色基質、偶氮化試劑1 、偶氮化試劑2 、偶氮化試
劑3、HC l （ 反應終止劑） 、細菌內毒素檢查用水。
1.2器材
旋渦混合儀、移液器、多道移液器、封口膜、試管架。
恒溫水浴箱（37±1℃）、分光光度計。
注意：接觸試劑及供試品的所有器皿必須是無熱原的（我公司提供無熱原耗材）。
玻璃器皿可經250℃干烤至少60分鐘去除熱原。
2. 供試品的貯存與預處理
備注：若供試品為血液類，請參照配套血液相關處理試劑使用說明書。
2.1供試品的pH值應在6 - 8之間，若超出此范圍，需用無熱原緩沖液、0.1N氫氧化鈉或0.1N鹽酸調節。
2.2若供試品中可能存在鱟實驗的干擾物質，處理參見【供試品的干擾試驗】。
2.3若供試品中可能含有β－葡聚糖（β－葡聚糖會產生G因子旁路反應，干擾內毒素檢測），需選用特異性鱟試劑（我公司提供）。
2.4若供試品為一些抗菌素如頭孢類抗菌素和磺胺制劑會對偶氮染色劑產生偶聯反應而干擾偶氮化顯色，需要選用不含偶氮化試劑的試劑盒（我公司提供）。
2.5若供試品的本底吸光度值大于0.5,必須對供試品進行稀釋后再檢測。
2.6若供試品顏色較深（例如溶血），或在酸性條件下顏色加深（例如一些組織培養介質）,必須設置供試品空白管以扣除供試品自身的顏色本底。
供試品空白管不加入鱟試劑，以等體積鱟試劑的溶劑（該處為細菌內毒素檢查用水）代替。其余操作同供試品管。
3.實驗操作
3.1細菌內毒素標準溶液配制
標準曲線所采用的內毒素濃度可以為0.01, 0.025, 0.05, 0.1 EU/ml或0.1, 0.25, 0.5,1.0 EU/ml。稀釋方法如下（以0.1, 0.25, 0.5, 1.0 EU/ml為例）：取細菌內毒素工作品1支，按細菌內毒素工作品使用說明書稀釋為10EU/ml 的內毒素溶液，再稀釋為1.0EU/ml的內毒素溶液，以1.0EU/ml的內毒素溶液為母液按下表稀釋成0.1,0.25, 0.5, 1.0 EU/ml的濃度梯度。配制好的內毒素標準溶液應在4小時內用完。
表1 內毒素標準溶液配制
| 內毒素濃度（EU/ml） | 1 | 0.5 | 0.25 | 0.1 |
| 加細菌內毒素檢查用水（ml） | 0 | 0.5 | 0.75 | 0.9 |
| 加1EU/ml內毒素溶液（ml） | 1 | 0.5 | 0.25 | 0.1 |
鱟試劑：按標示量加細菌內毒素檢查用水于鱟試劑中，輕輕振搖使鱟試劑*溶解,
注意不要用旋渦混勻儀激烈振搖。溶解的鱟試劑應在10分鐘內用完。
顯色基質：按標示量加細菌內毒素檢查用水于顯色基質中，輕輕振搖使顯色基質
*溶解。顯色基質溶液可在無污染的條件下于4 ºC貯存8小時以內。
偶氮化試劑1：按標示量加反應終止劑鹽酸于偶氮化試劑1中，
偶氮化試劑2：按標示量加細菌內毒素檢查用水于偶氮化試劑2中，
偶氮化試劑3：按標示量加細菌內毒素檢查用水于偶氮化試劑3中，
偶氮化試劑溶液可于4ºC貯存1周。
3.4實驗操作
取無熱原試管，加入100ml細菌內毒素檢查用水、內毒素標準溶液，或供試品。
再加入100ml鱟試劑溶液，混勻，37ºC溫育T1分鐘。
溫育結束，加入100ml顯色基質溶液，混勻，37ºC溫育T2分鐘。
溫育結束，加入500ml偶氮化試劑1溶液，混勻，
加入500ml偶氮化試劑2溶液，混勻
加入500ml偶氮化試劑3溶液，混勻，靜置5分鐘，于545nm波長處讀取吸光度
值。（見表２）
表 2 實驗操作
| | 陰性對照 | 內毒素標準 | 供試品 |
| 加細菌內毒素檢查用水（ml） | 100 | | |
| 加內毒素標準溶液（ml） | | 100 | |
| 加供試品（ml） | | | 100 |
| 加鱟試劑（ml） | 100 | 100 | 100 |
| 混勻，37ºC溫育 T1 分鐘 | | | |
| 加顯色基質溶液（ml） | 100 | 100 | 100 |
| 混勻，37ºC溫育 T2 分鐘 | | | |
| 加偶氮化試劑1溶液（ml） | 500 | 500 | 500 |
4.數據處理
建立標準曲線：Y = b X + a，其中
Y為545nm處吸光度值，X為內毒素的濃度，b為直線斜率，a為Y軸截距。
當實驗數據同時滿足如下三個條件時實驗才有效：
1.標準曲線的相關系數r≥ 0.980，
2.標準曲線zui低點的Y值大于陰性對照的Y值，
3.供試品平行管的平均值在標準曲線的區間內。
【供試品的干擾試驗】
供試品的干擾試驗詳見《中華人民共和國藥典》2005版中《細菌內毒素檢查法》的
“光度測定法干擾試驗”。當鱟試劑、供試品的來源、配方、生產工藝改變或試驗
環境中發生了任何有可能影響試驗結果的變化時，須進行干擾試驗,步驟如下:
1 選擇標準曲線中點或一個靠近中點的內毒素濃度（設為λm），作為供試品干擾
試驗中添加的內毒素濃度，配制含λm內毒素的供試品陽性對照，測量出該溶液
的內毒素濃度,稱為Cs；
2 測量出未添加外源內毒素的供試品溶液內毒素濃度,稱為Ct；
3 計算該試驗條件下的回收率R＝（Cs–Ct）/λm×100%
4 當R在50%～200%之間，則認為在此試驗條件下供試品溶液不存在干擾作用。
5 當R在50%～200%之外，需對供試品進行系列稀釋（稀釋倍數不得超過zui大有效
稀釋倍數MVD）或進行其它處理消除干擾,每一稀釋溶液都重復步驟1-3,直到內毒
素的回收率R在50%～200%之間。選擇回收率Rzui接近100%的稀釋倍數進行內毒
素檢測。