葉綠體復合體Ⅴ試劑盒說明書

分光光度法 25 管/12 樣

葉綠體復合體Ⅴ試劑盒 氧化磷酸化

正式測定前務必取 2-3 個預期差異較大的樣本做預測定測定意義：

葉綠體復合體Ⅴ又稱F1F0-ATP 合酶，由 F1 和F0 兩個亞單位組成。該酶利用呼吸鏈產生的質子電化學梯度催化ATP 合成，也可逆過程水解 ATP。復合體Ⅴ是線粒體氧化磷酸化和葉綠體光合磷酸化合成ATP的關鍵酶。

測定原理：

復合體Ⅴ水解ATP 產生ADP 和Pi，通過測定Pi 增加速率來測定復合體Ⅴ活性。

組成：

試劑二：粉劑×1 支，-20℃保存；臨用前每支加入 1.3ml 蒸餾水，充分溶解備用，用不完的試劑仍-20℃保存；

試劑四：粉劑×1 瓶，4℃保存；臨用前加入 3ml 蒸餾水，充分混勻；溶解后 4℃保存一周；試劑五：粉劑×1 瓶, 4℃保存；臨用前加入 10ml 蒸餾水，充分混勻；溶解后 4℃保存一周；試劑六：粉劑×1 瓶, 4℃保存；臨用前加入 10ml 蒸餾水，充分混勻；溶解后 4℃保存一周；

定磷試劑的配制：按H2O: 試劑五:試劑六:試劑七=2:1:1:1 的比例配制，配好的定磷試劑應為淺黃色。若無色則試劑失效，若是藍色則為磷污染（請根據需要，用多少配多少）；

注意：配試劑最好用新的燒杯、玻棒和玻璃移液器，或者一次性塑料器皿，以避免磷污染。

需自備儀器和用品：

可見分光光度計、臺式離心機、水浴鍋、可調式移液器、1ml 玻璃比色皿、研缽、冰和蒸餾水。

葉綠體的提取：

1、稱取約 0.1g 組織或收集 500 萬細胞，加入 1ml 試劑一，用冰浴勻漿器或研缽勻漿，很快研磨或搗碎，30 秒內完成，使之成為勻漿液。

2、將勻漿液于 200g（離心率），4℃離心 1min。

3、棄沉淀，將上清液移至另一離心管中，1500g，4℃離心 5min。

4、棄上清液，于沉淀中加入 0.5ml 試劑一混勻配成葉綠體懸浮液。混勻后測定葉綠體酶活性。

測定步驟：

1、酶促反應

混勻， 37℃（哺乳動物）或 25℃（其它物種）準確水浴 30min

混勻，4000g，25℃離心 10min，取上清液

2、定磷

混勻，室溫靜置 10min 左右，在 660nm 處讀取A 測定管和A 對照管，計算ΔA=A 測定管-A 對照管。

復合體Ⅴ活性計算：

標準條件下測定的回歸方程為y = 1.274x + 0.004；x 為標準品濃度（mmol/L），y 為A 值。組織中復合體Ⅴ活性的計算:

按樣本蛋白濃度計算

單位的定義：每mg 組織蛋白每分鐘產生 1 nmol 無機磷定義為一個酶活性單位。 復合體Ⅴ活性（nmol/min/mg prot）=[(ΔA-0.004) ÷1.274×V 反總×106]÷(V 樣×Cpr) ÷T=62.8× (ΔA-0.004) ÷Cpr

此法需要自行測定樣本蛋白質濃度。

按樣本鮮重計算

單位的定義：每g 組織每分鐘產生 1 nmol 無機磷定義為一個酶活性單位。

復合體Ⅴ活性（nmol/min /g 鮮重）=[(ΔA-0.004) ÷1.274×V 反總×106]÷(W× V 樣÷V 樣總) ÷T =31.37× (ΔA-0.004) ÷W

按細菌或細胞密度計算

單位的定義：每 1 萬個細菌或細胞每分鐘產生 1 nmol 無機磷定義為一個酶活性單位。

復合體Ⅴ活性（nmol/min /104 cell）=[(ΔA-0.004) ÷1.274×V 反總×106]÷(500×V 樣÷V 樣總) ÷T=0.063× (ΔA-0.004)

V 反總：反應體系總體積，3×10-4 L； V 樣：加入樣本體積，0.125 ml；V 樣總：加入提取液體積，0.5 ml；T：反應時間，30 min；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/ml；W：樣本質量，g；500：細胞或細菌總數，500 萬。

葉綠體復合體Ⅴ試劑盒 氧化磷酸化