LabFD AgeI 快速內切酶

產品貨號：F3501S

儲存條件：-20℃

同裂酶：AsiGI, CspAI, BshTI, PinAI；（注：同裂酶對于不同的甲基化修飾可能具有不同敏感性。）

產品組成：

產品簡介：

LabFD™ 快速內切酶是一系列經過基因工程重組的快速限制性內切酶，適用于質粒 DNA、PCR 產物或基因組 DNA 等的快速酶切。

所有 LabFD AgeI 快速內切酶在通用的LabFD™或LabFD™ Color Buffer中都具有優良的活性，能夠在 5~15 分鐘內完成酶切。此外，蘭博利德去磷酸化、連接試劑在LabFD™ Buffer 中均具有 100% 活性，支持一管化反應，提升“酶切-修飾-連接”的體驗。LabFD™ Color Buffer 包括紅色和黃色示蹤染料，可將產物直接用于凝膠電泳。LabFD™ Color Buffer 的紅色染料與 2500 bp 雙鏈DNA 片段在 1% 瓊脂糖凝膠中遷移速率接近；黃色染料與 10 bp雙鏈 DNA 片段在 1% 瓊脂糖凝膠中遷移速率接近。

建議反應條件：

1×LabFD™緩沖液；37℃溫育；參照“DNA 快速酶切流程”配制反應體系。

失活條件：

80℃溫育 20 min。

質量控制

功能活性檢測:

最適反應溫度下，在 20ul 反應體系中，1ul LabFD™ AgeI 能夠在 15min 內wanquan消化 1ug p615 DNA。

超長時間溫育檢測：

最適反應溫度下，將 1ul LabFD™ AgeI 與 1ug p615 DNA共同溫育 3h，未檢測到其他核酸酶污染或星號活性引起的底物非特異性降解，延時酶切可能出現星號活性。

酶切-連接-再酶切檢測：

37℃下，使用 10 倍酶量的 LabFD™ AgeI 消化 DNA 底物，回收酶切產物，在 22℃下使用 T4 DNA Ligase (Fast) 可以將超過95% 的酶切產物重新連接。將連接產物再次回收后，使用相同的內切酶可以重新切開 95% 以上的連接產物。

非特異性內切酶活性檢測：

最適反應溫度下，將 1ul LabFD™ AgeI 與 1ug 超螺旋質粒 DNA 共同溫育 4h，使用瓊脂糖凝膠電泳檢測，質粒 DNA 仍然處于超螺旋狀態。

藍白斑檢測

使用 1μl  LabFD™ AgeI消化含有 lacZα 基因且僅在該基因上具有1個酶切位點的特定載體。將酶切產物重新連接后轉化到大腸桿菌感受態細胞中，涂布在含有X-gal、IPTG 和相應抗生素的LB平板培養基上生長。成功連接的β-半乳糖苷酶基因可以正確表達，并生長出藍色菌落；而因酶切末端降解等原因未能重新連接的產物將得到白色菌落。對于 LabFDTM 系列限制酶而言，白色菌落的比例應當小于 1%。

使用方法：

1. DNA 快速酶切流程（1）在冰上按如下建議的加樣順序配制反應體系：

2. 
   

a. 本體系適用于經過純化的 PCR 產物酶切。未純化的 PCR 產物具備一定的離子強度，10× LabFD™ Buffer 加入量可適當減少至2μl。但由于DNA 聚合酶同時具有外切酶活性，會影響酶切產物，因此如下一步需進行克隆等操作，建議酶切前對PCR產物進行純化；

（2）輕柔吸打或輕彈管壁以混勻（切勿渦旋），然后瞬時離心以收集掛壁液滴；

（3）37℃溫育 15min（質粒），或 15~30min（PCR 產物），或 30~60min（基因組 DNA）；

（4）80℃溫育 20min 即可使酶失活，停止反應（可選）；

（5）如果使用 LabFD™ Color Buffer 進行酶切反應，得到的產物可以直接進行上樣電泳。

2.雙酶切或多酶切

（1）每種快速內切酶的用量為 1ul，并根據需要適當擴大反應體系；

（2）所有快速內切酶的體積總和不得超過總反應體系的 1/10；

（3）如果所用的幾種快速內切酶的最適反應溫度不同，應先以最適溫度低的酶開始酶切，再添加最適溫度較高的酶，在其最適反應溫度下進行酶切反應。

3.適用于質粒的擴大反應體系

注：如果總反應體系大于 20ul，應適當增加溫育時間，盡量使用水浴、金屬浴或沙浴。

不同 DNA 中的酶切位點數量

甲基化修飾影響

在不同反應緩沖液中的活性

注：活性數據來自 LABLEAD 限制酶標準反應體系下的檢測。